HinterKiemerschnecken – Wikipedia

Quand Escargots arrière (Opisthobranchia, grec οπισθοβρίγχια – ὄπισθεν “derrière”, βράγχιον “Kieme”) est référé au groupe d’escargots, qui a les branchies derrière le cœur et surtout une cavité du manteau (cependant, cette cavité de mantle est manquante à partir de la plus grande subordonnée de la cavité du manteau). Hinterkiemer est ermite et a des hermaps. Beaucoup ont une coquille soutenue ou pas du tout et au lieu de la respiration du printemps ou de la peau de Kammkiden Spring à côté de Kammkiden. Les espèces à l’échelle ont développé des techniques de dissuasion, de camouflage ou de distraction pour la légitime défense. La plupart s’installent près du fond marin. Cependant, il existe également des nageurs permanents et peu d’espèces d’eau douce. Hinterkiemer se nourrit des AAS et des résidus végétaux, des pâturages, des pâtes de plantes marines, des colonies de petits animaux, des éponges, des animaux en ortie ou des proies de chasse. Une caractéristique spéciale est des espèces avec une photosynthèse indirectement utilisée à travers de petites algues symbiotiques non digérées ou des chloroplastes adoptés. Votre vie assez courte se déroule en deux à trois phases de développement. La phase larvaire non cohérente (larves de vélo) est souvent dépensée sous forme de plancton. Le Taxon est connu depuis le 19e siècle et également partie intégrante de la systématique moderne de Ponder & Lindberg (1997) ou Bouchet & Rocroi (2005).

La caractéristique dominante des escargots des enfants de l’arrière (opiste Hobranchia) est des branchies à droite derrière le cœur.

Cet emplacement est un produit de l’aplaitotogenèse. Cela commence par un manteau ( Pallium ). À une extrémité (tête de tête), il y a u. La gorge, les yeux et les ganglions nerveuses. Ceci est suivi de Les organes intérieurs. Le tube digestif de la gorge à l’anus et les brins nerveux appariés tirent le corps de la tête à la fin. En formant le fort muscle du pied sur le dessous de la tête vers la fin, la part en aval plus douce avec les organes intérieurs est pressé et prend une tournure légale ( Torsion ). L’ordre intérieur des organes dans le sac de manteau (Gutidack) reste inchangé. De l’extérieur, cependant, la position des organes change comme une distance de la tête par rapport à l’état devant la torsion. Chez les enfants avant, une torsion de 180 ° a également entraîné les branchies plus proches de la tête que le cœur. Cependant, une phase de détection est suivie par les flux arrière, dans lesquels les changements dans la situation de la première torsion sont partiellement annulés. Ensuite, le cœur est à nouveau plus proche de la tête que les branchies et le sac de manteau en diagonale juste derrière le cœur.

La plupart des escargots arrière, en particulier les skieurs nues, ont jumelé des rhinophores pour la perception olfactive et la rhéoréception (perception du flux). Il est plus ou moins frappant de clubs, en forme de club, en forme de stabble, en forme de ventilateur ou en forme de bol, dans lequel beaucoup peuvent se promener pour se protéger. ^{[2] [3] [4]}

respiration À bien des égards, la respiration se déroule à travers les grottes de peignage (Cténidia) dans la grotte de manteau. Les Kammkiemen sont occupés par de nombreuses cellules ciliées (cellules cilières), des ascenseurs de peau bien étendus qui font échanger le gaz lorsque l’eau traverse. Cependant, les grottes et les branchies du manteau sont reculés dans les enfants nus. Au lieu de cela, les processus cutanés (Cerata) se forment au dos (CERA), qui sont traversés par des navires capillaires fins connectés au cardiovasculaire. Les Cerata sont très ramifiés en interne ou en externe. Dans ce dernier cas, l’espèce produise diverses formes caractéristiques: rosettes, faisceau isolé, touffes tracées et non attirée, y compris A.M. Semblable aux branchies internes, la ramification forte augmente la surface de la peau et améliore l’échange de gaz avec l’eau. On parle donc de fortes branches externes de Plume .

Dans le cas de divers escargots (par exemple Aeolidiidae), les Cerata sont passés par des papillaires liés à la voie digestive et prennent le relais, entre autres. Tâches de défense, voir les mécanismes de protection.

Les escargots arrière varient dans le Taille De quelques millimètres à des dizaines de centimètres. De nombreux escargots ont une longueur d’environ 2 à 6 cm. De minuscules escargots peuvent être trouvés dans diverses familles de la subordination des escargots du bouclier de tête (céphalaspidea), par ex. B. Dans un natif (0,9 mm), Retusa Sp. (1,5 mm). Escargots analogues tels que B. Acteon lacunatus , Acteon parallelus , Acteon semipsidulatus (3 mm), Enotepteron rosewateri (4 mm), Siphopteron quadrispinosum (5 mm). Les escargots plus petits sont z. B. Hermaea Dendritis (11 mm), Coryphella gracilis (15 mm). Les escargots de taille moyenne sont z. B. chignon en velours vert (souvent 2 cm), Glaucus atlanticus (4 cm), Bulla fleuri (6 cm). Les plus grands types d’escargots sont l’escargot d’arbre hirsute (10 cm), Tritona Hombergi (12 cm). Avec les plus gros escargots, le genre place Seehasen ( Aplysia ). Dans les pays européens que vous avez trouvés Aypsia enveloppé de 40 cm de longueur. Depuis Aplysia Vaccaria Même des copies de 75 cm de long sont connues.

HinterKiemer a ce qui suit Phases de la vie : le Phase de maturation Dans la cellule d’oeuf dans les cordes situées ou en frai qui sont complétées par l’éclosion, qui ne dépensait pas dans tous les types de larves, souvent dépensées comme plancton, qui se termine par la métamorphose (conversion de conception), et la phase comme l’escargot réel avec reproduction. L’espérance de vie des hinton n’est pas très élevée. C’est environ un an dans de nombreuses espèces. Certains escargots meurent peu de temps après avoir pondu les œufs. Certaines attentes de vie exemplaires suivent: Eubranchus pallidus – 8 doux, Archidoris Tuberculata – 12 doux, Aeolia Papilly – 16 doux, Dendronotus feuillu – 24 doux.

En raison des branchies, les escargots arrière sont des habitants de l’eau. Parmi eux, il existe des espèces d’eau douce (dans le Acochlidiacea ). ^{[5] [6]} Cependant, le nombre dominant d’espèces est des créatures marines.

Les habitats maritimes peuvent être décrits selon différents critères:

• En éloignement côtier après la profondeur
• Zones côtières sur la base des marées (zone d’inondation permanente, zone de marée inférieure et supérieure, décorations de porte)
• Selon les types de sols (planchers de sable, planchers de sédiments, boue et sols en soie, planchers durs, planchers rocheux)
• Ensuite, des indications (alga-, tangwalités, surpirasses, coraux provoquent, les colonies von moostery, les swasmes, nessager)
• Après les zones climatiques (Arctique – Seas tropicales)

Le groupe d’escargots Hinterki comprend un très large éventail d’espèces. Il n’est donc pas surprenant qu’ils se produisent dans toutes les mers et les océans et ont développé une grande variété d’habitats.

Zones climatiques .
HinterKiemer vit dans toutes les mers et les océans. Cependant, les résidents extrêmes sont des espèces qui vivent dans les eaux de l’Arctique ou colonisent l’Antarctique. Dans les eaux arctiques z. B. l’escargot d’arbre hirsute ( Dendronotus feuillu ) observé. Sur les côtes de Spitzbergen Coryphella verrucosa éprouvé. Dans les zones côtières de l’Antarctique ^[7] ont été trouvés des escargots des espèces notaeolidia depressa.

profondeur . La vie des escargots est liée à leurs sources alimentaires. À cet égard, par exemple, des espèces qui vivent directement ou indirectement à partir de plantes photosynthétifiantes, aucun enregistrement en mer profonde en dessous du mésopélagial (inférieur à 1000 m) n’est attendu. La majorité des escargots vivent dans la zone euphotique de l’épipelagiale, dans laquelle la photosynthèse a lieu, est la plus grande diversité et la bioactivité la plus élevée. En fait, cependant, certains derniers temps qui se sont adaptés à la vie dans des zones profondes. Voici quelques exemples. Les espèces qui vivent dans des zones de gewatics ou d’eau plate sont, parmi. Aplysia ponctuée , Onchidoris muricata (jusqu’à 15 m), Goniodororis châtaigne (jusqu’à 25 m). Arts, mourir dans les noms de complorition, Sind U. un. Tritonia Plebeia (jusqu’à 130 m). Les espèces qui vivent en dessous de la marée inférieure ou de la zone d’inondation permanente sont, parmi. Archidoris Tuberculata (jusqu’à 300 m), Coryphella verrucosa (jusqu’à 450 m), escargot de fil à la boutique large ( Aeolia Papilly ) (jusqu’à 800 m). Les espèces trouvées en mer profonde sont, entre autres. Acteon terne (800–4700 m), Acteon melampoïdes (400–4700 m).

Un autre extrême en ce qui concerne la profondeur de l’eau forme des nageurs permanents comme le toxicomane en profondeur Glaucus atlanticus . En raison de bulles d’air avalées, il flotte à l’arrière et mené par des courants maritimes à la surface de l’eau.

Types de sols .
Les sols glissés et en soie sont généralement près des plus grandes colonies végétales, des côtes, dans les zones Watt. Ils sont peuplés de restes qui leur tirent des nutriments, mais aussi par des chasseurs de proies qui chassent les petits animaux ou creusent lorsqu’ils sont déterrés. Les sols durs sont des substrats de pierres, de planches, de métal. Bien sûr, ils peuvent avoir été créés (taupes, ponts, murs de navire, empilage de feuille, objets coulés, etc.). Les sols durs sont sur le fou, u. Archidoris Tuberculata ou Acanthodoris pilosa . Les planchers de roche apparaissent sur les planchers marins, mais souvent aussi sur des sections côtières rugueuses. Vous serez z. B. de types d’escargots de sillon ( Janolus Cristatus ) ou des escargots de fil ( Famine de la couronne , Facelina bostoniensis ) habité.

Sol .
Les colonies plates de plantes aquatiques ou d’animaux d’eau sessiles sont souvent habitées par des escargots de fil.

Hinterkiemer est des animaux hermaphrodites. Tu as tellement appelé Ermitage , Keulrande, qui génèrent tous deux les cellules germinales nécessaires à la reproduction.

Transfert de spermatozoïdes
Contrairement aux vrais ténias Hermaphrodites, les amateurs de dos sont Pas d’auto-fruits , mais ont besoin d’un partenaire pour fertiliser les cellules d’oeufs. Lors de l’appariement, les deux partenaires s’approchent de près les uns des autres, apportez leurs ouvertures de genre les unes sur les autres et effectuent un échange de graines. Il se peut que l’accouplement se déroule mutuellement, c’est-à-dire que les deux partenaires agissent comme des hommes et des femmes. Il y a aussi des chaînes d’accouplement si appelées (par exemple dans les lapins en mer), en particulier avec une forte densité de population, dans laquelle l’animal arrière n’agit que comme une femme et les animaux entre les deux comme un mâle et comme des femmes.

Schneckeneier

En conséquence, les cellules d’oeufs seront plus tard séparées dans des couvertures de type galerie dans des cordons ou ligaments de frai torsadés situés ou ébouriffés. Le Envelopper Différent en cohérence et en résistance, les cellules d’oeuf dans la richesse. Chez certaines espèces, les nutriments sont attachés aux cellules d’oeufs, ou il y a des cellules dans les couvertures qui servent de dépôt alimentaire dans la phase de maturation. Les embrayages sont ancrés sur le sol ou attachés à des pierres, des rochers. Ils sont stockés dans des zones protégées par les vagues près de la côte. Le Lanic Sont attachés au sol en fonction de l’habitat, des algues, de la saveur, de l’herbe marine, des polypsticks ou autrement.

Cependant, l’embrayage et les cordons de frai sont laissés à eux-mêmes sans autre soin de couvain. Le Nombre de cellules d’oeuf séparées c’est très differant. Bouclier de tête escargots de l’espèce Émoussé Vepose environ 50 œufs jusqu’à quatre, l’espèce Location tronquée Environ 700 œufs dans une couche de plancher. Vers des escargots de l’espèce Famine de la couronne pondre jusqu’à 30 000 œufs, citrons marins de l’espèce Archidoris Tuberculata Même jusqu’à 300 000 œufs dans des cordes de frai.

Le nombre d’oeufs et la qualité des coquilles de galerie représentent deux Principes de développement : Qualité contre quantité. Bien que les couches du sol soient bien protégées par l’emplacement et les couvertures plus fermes, les œufs contenus sont richement et avec des nutriments pour les escargots potentiels, les cordes reproductrices avec un grand nombre pour la production de masse représentent des œufs simples. Dans le sens de l’objectif de survie en tant que population, cependant, aucune des stratégies ne peut être élue comme gagnante claire. Peu, bien protégés et les œufs équipés sont suffisants, car le taux de perte par individu a été réduit par une bonne précaution. Cependant, l’inventaire est moins résistant aux catastrophiques. Le taux de perte par individu est élevé pour de nombreux œufs. Au niveau de la population, cependant, cela est compensé par le grand nombre d’individus et la possibilité de la dispersion plus large des descendants: la survie est généralement moins spécimen pour la préservation. À cet égard, le «meilleur choix» dépend localement du biotope.

De l’œuf à l’escargot

Des cellules d’oeufs plus tard, soit les jeunes escargots entièrement développés (par ex. Émoussé ) En ou deux, appelés dans de nombreux types La larve de velours . Les larves sont développées différemment: certaines (par exemple la Coryphella brun , Archidoris Tuberculata ) écloser avec de petites coquilles protectrices. Même les espèces qui sont des escargots d’escargots comme escargots adultes ont souvent une coquille comme larve (par exemple le lac Angel Clione Limacina ). Après l’éclosion, les larves Veliger sont réparties par le mouvement de l’eau dans l’habitat (zones de plancher, algues et tangwalds, prairies de mer). Soit ils restent là. Ou ils sont chassés par les courants et vivent temporairement comme Plancton avant de tomber par terre; Donc les escargots, u. U. même de nouveaux habitats. Seulement après partiellement drastique Conversions de Gestalt Les escargots sont ensuite créés à partir des larves.

Processus temporels
Un Transmission des graines ne se produit pas dans différents types à chaque affrontement, mais à une ou deux fois l’accouplement par an. Les cellules d’oeuf ne sont pas nécessairement immédiatement pendant ou après la transmission des graines fécondé et exposés, mais le sperme peut être stocké en intermédiaire et les cellules d’oeufs fécondées peuvent être séparées dans le temps. Le Mature Des jeunes escargots ou des larves de veliger, cela prend quelques jours à quelques semaines. Avec l’escargot de bouclier de tête Émoussé Glisser après environ quatre semaines de jeunes escargots entièrement entraînés. L’éclosion des larves Veliger Location tronquée Après quelques jours, à Lié à la flabellina Après cinq à huit jours, à Coryphella brun Après deux semaines, à Janolus Cristatus Seulement après trois semaines. Également Phase de Larven ou de plancton Est articulé et peut même être une très grande phase de la vie. À Aeolia Papilly La phase du plancton prend quelques semaines avec le Archidoris Tuberculata Plusieurs mois (espérance de vie: environ douze mois!). Les escargots d’aile (Pteropoda) restent même dans le plancton tout au long de leur vie.

Les formes de nutrition ne sont pas spécifiques au rythme arrière, mais pour les biotopes dans lesquels ils vivent. Parmi les flux arrière, il y a des représentants pour chaque forme et formes mixtes.

Recyclage des restes S’adapter aux AAS et aux résidus végétaux.
Ils se trouvent souvent dans des zones avec des planchers lâches, de la boue, des lisses, desflats de boue ou dans des zones à segmentation organique. Des types comme ça Émoussé Avant les sols.

Escargots herbivore ( Herbivore ) Des algues (des planchers, des pierres, des plantes peuplées de petites algues aux algues rouges, brunes et vertes), des forêts de tang, des prairies de l’herbe marine. Ils paissent les stocks de l’usine z. T. systématique. Des exemples d’herbivores sont le Seehasen (par exemple. Aplysia ponctuée ), le Vessie maritime à rayures ( Bulla fleuri ) Et tous les escargots de la gorge à l’exception de trois espèces. Ces derniers se sont spécialisés dans la succion des cellules végétales.

Escargots carnivore ( Carnivore ) sont dans tous les ordres associés. Ils se nourrissent d’autres animaux comme B. Animaux de mousse, foraminifères, vers plat, vers à poils, éponges, animaux en ortie, manteaux, moules, petits types d’escargots ou même spécimens inférieurs de son genre. Animaux de mer immobiles Comme les colonies d’animaux de mousse, les animaux en ortie, les champs d’éponges sont pâturés de manière similaire aux plantes. Les structures arborescentes verticales sont généralement rapprochées pour la branche. Proie mobile D’un autre côté, les randonnées sont chassées.

La consommation se fait principalement avec leurs râches ( Radula ) Retire les pièces. Certaines espèces aiment Émoussé , PHILINE APERTA ou Scaphander Wooden Dégradez la proie beaucoup plus petite que entière, puis les écrasez dans les estomacs avec des plaques à mastication. Certaines de ces espèces ont donc des réglementations sur la radula.

Un phénomène intéressant est photosynthèse peut utiliser pour votre propre alimentation. Il existe différents exemples de cela.

Les escargots du genre Phyllodesmium (Aeolidiidae) Nourrir des coraux mous. Lorsqu’ils mangent, ils prennent également les zooxanthelles (algues symbiotiques, unicellulaires) vivant dans une symbiose. Les algues ne sont pas digérées, mais vivent dans la fin d’escargot. Votre intestin est presque le remplissage du corps, s’étend aux processus corporels et a une peau extérieure translucide. Cela signifie que la lumière peut atteindre les zooxanthelles à l’intérieur et vous permet de photosynthèse. Le Phyllodesmium Peut ensuite utiliser les glucides générés par les algues et peut passer presque sans nourriture en plein air.

Escargots en velours vert ( Elysia viridis ) ou Instruction hermaea Mangez u. Des algues. Si vous absorbez le contenu des cellules d’algues, vous absorbez également les chloroplastes contenant des pigments (organite); La chlorophylle donne ensuite aux escargots une couleur verte, qui peut également servir le camouflage; Les chloroplastes adoptés sont appelés kleptoplastes. L’organelle est indestructible dans le corps à travers les glandes peu profondes du milieu ramifié et finalement stockée sous la peau extérieure. Dans l’escargot, l’organelle stockée obtient les matières premières pour la photosynthèse: la lumière à travers la coque extérieure perméable, CO ₂ En tant que métabolisme cellulaire des tissus environnants, ainsi que de l’eau. Vous pouvez donc continuer à travailler et à produire des hydrocarbures riches en énergie, mais pas à long terme: à Elysia viridis plusieurs semaines à Instruction hermaea Seulement quelques jours. Ensuite, les organites meurent et doivent être remplacés. À Instruction hermaea Comme les organites étrangers tels que la composante de remplacement d’un entraînement hybride: avec eux, l’escargot pante le temps jusqu’à la nouvelle nourriture primaire (algues).
Les chloroplastes ne peuvent survivre que dans les cellules de l’escargot car un transfert de gènes horizontal très inhabituel a eu lieu entre la cellule végétale et les cellules animales.

Comme tous les escargots d’eau, le backstream a divers prédateurs potentiels en commençant par des autres espèces, des types d’escargots plus grands pour pêcher. Cela nécessite des mécanismes de protection.

Avec des espèces avec Logement Formez le logement dur de l’interprétation différente comme un bunker avec le bunker. Les capteurs biologiques qui mesurent les vibrations ou les turbulences d’eau, réagissent aux changements de lumière ou d’ombre, jusqu’aux yeux forment le système d’alerte précoce associé.

En l’absence du logement, cependant, cette protection ne fonctionne pas en l’absence du logement. Une possibilité est de prendre les ennemis naturels le désir de manger en utilisant des poisons ou des tissus caustiques. Alternativement, la coloration est utilisée pour le dissuasion, la coloration, les motifs de surface et les formes pour le camouflage sont utilisés, la défense ou les colorants sont émis à des fins de défense.

Celui utilisé Cadeau De nombreux escargots entrent dans leur corps en mangeant.

Ainsi, un certain nombre d’enfants nus se nourrissent d’éponges très toxiques et non comestibles pour d’autres animaux. Cependant, les escargots peuvent accueillir leurs poisons sans dommages et le récupérer dans leurs organes extérieurs.

En prenant le poison, l’effet protecteur de la proie est transféré à l’escargot. Poisons Stocking Les espèces deviennent non comestibles et peu attrayantes comme des proies. Des exemples sont de magnifiques escargots (Chromodoridae) ou des escargots de verrure. Dans d’autres espèces, les tentatives alimentaires ont été prouvées qu’elles font elles-mêmes du poison.

Certains pratiquent une méthode similaire Fil Snacks (Aeolidiidae). Ils se nourrissent en toute sécurité des coraux et des mollusques renforcés par l’ortie. Les capsules d’ortie ( Le nématocyte ) la proie intacte à leurs conseils. Là, ils sont déposés dans les sacs d’ortie du corps et servent désormais une légitime défense. Ils sont abattus via des canaux d’ortie ou activés lorsque les pointes de la cératasie se cassent. Étant donné que les escargots ne font pas les capsules d’ortie elles-mêmes, ils seront Kleptocnide (Nesseldieb).

Il existe également un certain nombre d’enfants nus qui créent des substances acides caustiques. Le Phylliden , un groupe dans le Escargots ( Doridoidea ), produire, par exemple, des alkylisocyanures, des composés réactifs hydrocyaniques; Flankenkiemer ( Nope ) ou la Alarme en mer ( PHILINE APERTA ) produire de l’acide sulfurique; Plus d’exemples sont Archidoris Tuberculata et Polycera quadrilineata . Lorsqu’elles sont touchées ou menacées, les substances caustiques des sécrétions cutanées sont emballées de glandes à l’extérieur, et argent ainsi le désir de tout contact.

Lapins de mer toxiques ( Aplysia gigantea ) ^[8] et des escargots de ski de flanc ( Pleurograg tacheté ) a causé la mort de nombreux chiens en Australie et en Nouvelle-Zélande qui ont léché les escargots sur la plage. Pleurobranchaea produit même de la tétrodoxine, un poison nerveux qui peut également être trouvé dans la pêche sphérique et les poulpes d’anneau bleu. ^[9]

Si disponible, il y a une apparence frappante en couleurs vives Couleurs Aussi non seulement décoratif, mais très fonctionnel.

En lien avec les toxines corporelles, les couleurs en ont une Graphiques de signalisation . Ils sont censés avertir et effrayer les attaquants afin que l’urgence de l’alimentation ne se produise pas. Au Protection par dissuasion mais utilisent non seulement les espèces de poisons, mais aussi certaines non toxiques. Ces derniers ont également des couleurs frappantes, mais prétendent seulement leur toxicité.

Alternativement, la coloration ainsi que les motifs de surface et les formes de corps sont également camouflage utilisé. Par exemple, le sac coloré des escargots de l’espèce Hermea Dîner Sur les algues vertes, sucer avec les nutriments, également les chloroplastes contenant des pigments, la couleur des algues vertes prennent et est donc parfaitement déguisée. Le Escargot de fil violet ( Flabelinae nourri ) et le Scarg de fil blanc violet -tip ( Pédata coryphella ) Ayez une forme et une couleur frappantes sur un fond neutre. Mais leur habitat est Forêts de Rotalgen. En cela, ils sont discrets, en raison des nombreux processus de dos de type tentacule, n’émettent aucune surface compacte et sont donc difficiles à identifier en cas de conditions visuelles sous-marines. Escargots espèces Peltodoris atromaculata Ayant une peau blanche avec des taches brun foncé à l’emploi noir de différentes tailles. Sur les éponges de l’art Petrosia ficiformis vivant, cependant, ils ne se démarquent pas en raison de la coloration et du motif de léopard.

Un autre mécanisme de protection est un MANIEURS DE DISTRACTION . Seehasen donne un nuage d’encre lorsqu’il est touché. Certains escargots de fil sans capsules d’ortie stockés ont des cerata, qui sont remplis de substances odorantes désagréables (par ex. Phyllodesmium grand ). Semblable aux lézards, vous pouvez repousser une ou plusieurs extensions lorsqu’elle est touchée. Les continues repoussés continuent d’effectuer des contractions. La substance malodorante émerge après les déchets et est distribuée. Cela devrait irriter les attaquants potentiels et donner à l’escargot le temps de fuir.

On estime qu’il y a environ 6 000 espèces aujourd’hui.

La taxonomie des escargots est soumise à des révisions et à un changement. Par conséquent, il existe différentes systématiques. Le classique est généralement celui de J. Thiele (1929-1935) ^[dix] dos. Il a été reconnu jusqu’aux années 1990. Une systématique plus moderne et la dernière systématique sur la base d’approches purement morphologiques est celle de Ponder et Lindberg (1997). ^[11] Le système actuel est orienté en phylogénétiquement et remonte à Bouchet & Rocroi (2005). ^{[douzième] [13] [14]}

Taxonomie von Bouchet & Rocroi (2005) [ Modifier | Modifier le texte source ]]

Selon la taxonomie de Bouchet & Rocroi (2005), l’opiste Hobranchia est un groupe informel dans les clades des différents Kiemer (Heterobranchia):

Comparé à la taxonomie de Ponder & Lindberg (1997)
existe u. Les différences suivantes:

• le Il met Cephalaspidea est comparée au Subordination Cephalaspidea réduit,
• le Il met Nudipleura est émergé de la restructuration Subordination Nudibranchia et une famille de Subordination Nopet,
• le Il met Umbraculida a été réorganisé et en tant que groupe de sœurs Il met Cephalaspeda Zur SETELLET
• le groupe Acochlidiacea a été ajouté
• le groupe Cylindrobullida a été ajouté, il en contient un Trop-famille Cylindrobulloidea qui a jusqu’à présent Subordination Cephadapidea Zugeordnet War,
• le Subordination Notaspidea a été dissoute; le Famille Tylodinidae et ombraire pour être dans la ville Trop-famille Ombraculate dans Dem Il met Umbraculida inséré; le Famille Pleurobranchidae était dans le Trop-famille Pleurobranchoidea ( Subklade Pleurobranchomorpha, Il met Nudipleura) inséré
• Lorsque vous insérez les familles dans de nouvelles Posé Une sous-taxa manquante a également été générée.

Le regroupement est le résultat de diverses études phylogénétiques mais aussi morphologiques, qui comprennent:

• La paraphylia du Subordination Céphalaspidea
• La paraphylia du Subordination Nope ^[15] ,
• le Sans terre Nudibranchia et pleuro branchorpha forment des groupes soeurs
• La monophylie étendue de la groupe Acochlidiacea

montré.

Taxonomie par Ponder & Lindberg (1997) [ Modifier | Modifier le texte source ]]

Selon la taxonomie de Ponder & Lindberg (1997), l’opiste Hobranchia est un ordre dans le chevauchement des différents Kiemer (Heterobranchia):

• Classe Gastropoda (escargots) G. Cuvier, 1797
  • Sous-classe Orthogastropoda W.F. Ponder & D.R. Lindberg, 1995
    • Sous-classe Soutenir L. Salvini-Plawen & G. Haszprunar, 1987
      • Primordial Heterarebranchia J.E. Grey, 1840 / G.Haszzplar, ^[16]
        • OrdnungHétérostropha (différents tours) P.H. Fischer, 1885
        • OrdnungOpist Hobranchia (Backki Chicken) H. Milne Edwards, 1848
          • Unterordnung Anaspidea (Seehasen) P.H. Fischer, 1883
          • Unterordnung Cephalaspidea (Kopfschildschnecken) P.H. Fischer, 1883
          • Unterordnung Gymnosomata (Ruderschnecken) H.M.D. de Blainville, 1824
          • Unterordnung Notaspidea (Flankenkiemer) P.H. Fischer, 1883
          • Unterordnung Nudibranchia (Nacktkiemer) H.M.D. de Blainville, 1814
          • Unterordnung Sacoglossa (Schlundsackschnecken) H. von Ihering, 1876
          • Unterordnung Thecosomata (Seeschmetterlinge) H.M.D. de Blainville, 1824
        • OrdnungPulmonata (Lengings Put) G. Cuvier dans H.D.M. Blainville, 1885

Les modifications de la taxonomie précédente remontent aux études morphologiques:

• Le problème du paraphylisme de la prosobranchia a été résolu
• Intégration en partie du recalcul de la relation entre l’opiste Hobranchia et Pulmonata

Taxonomie traditionnelle [ Modifier | Modifier le texte source ]]

Les taxonomies plus anciennes remontent à J.Tiele et utilisent une division à trois-division du gastropoda sur la base des organes respiratoires. L’opsic Hobranchia forme l’une des branches principales.

• Hans A. Baensch / Robert A. Patzner: Mergus Sea Water Atlas. Volumes 2, 4 et 5, Mergus-Verlag, Melle.
• Svein A. Fosså, Alf Jacob Nilsen: Aquarium de récif corallien. Volume 5, Birgit Schmettkamp Verlag, Bornheim, ISBN 3-86659-014-8.
• Corail. Dans: Magazine d’aquaristique d’eau de mer. N ° 26, avril / mai 2007, Nature et Tier Verlag Münster, ISSN 1439-779X .
• Helmut Debelius / Rudie H. Kuiter: Escargots nus des océans du monde. Kosmos Verlag, ISBN 978-3-440-11133-8.
• Grell, K.-G. et FMI: Haminea hydatis (opiste Hobranchia) – Développement embryonnaire. Publications sur les films scientifiques, série 10, n ° 47, 1977, IWF Göttingen, section de biologie, ISSN 0073-8417 , Accompagnement au film ( Deux: 10.3203 / IWF / E-309 ) du FMI, Göttingen.
• Kathe R. Jensen: Systématique phylogénétique et classification de la Sacoglossa (Mollusque, Gastropoda, Opisthobranchia). Dans: Transactions philosophiques: sciences biologiques. Bande 351, nr. 1335, S. 91–122, Londres 1996, ISSN 0080-4622 .
• Heike Wägele et Annette Klussmann-Kolb: Opisthobranchia (Mollusca, Gastropoda) – Plus que de simples limaces visqueuses. Réduction de la coquille et ses implications sur la défense et la recherche de nourriture. Dans: Frontières en zoologie. Bande 2, numéro 1, février 2005, S. 3, doi: 10.1186 / 1742-9994-2-3 , PMID 15715915 , PMC 554092 (Texte complet gratuit).
• V. Vonnemann, M. Schroedl, A. Klussmann-Kolb et H. Wägele: Reconstruction de la phylogénie de l’opisthobranchia (mollusque: gastropoda) au moyen de séquences de gènes d’ARNr 18S et 28S. Dans: Journal of Molluscan Studies. Bande 71, nr. 2, S. 113–125, Londres 2005, ISSN 0260-1230 , est ce que je: 10.1093 / mollus / eyi014 .
• Fredy Brauchli: Une agitation colorée. Dans: Magazine en ligne Vivre, bien sûr. 03/2005, S. 26–31, Pdf .
• Kathe R. Jensen: Sacoglossa (mollusque: gastéropode: Opisthobranchia) de Singapour. Dans: Le Bulletin de Raffles de zoologie. Supl.No.22, pp. 207–223, 20 décembre 2009, Pdf .
• Seaslogforum: Phyllodesmium magnum, licenciement des Ceratas ( Mémento à partir du 13 mars 2012 dans Archives Internet ), Access 11 février 2010.

1. ↑ H. Milne Edwards: Note sur la classifi¢cation naturelle des mollusques gaste¨ropodes . Dans: Annales des Sciences Naturelles. Paris (Serie 3), bande 9, 1848, S. 102–112.
2. ↑ Volker Storch: Biogene amine à Rezeptorganen von gastropoden (Prosobranchia, Opisthobranchia) . Dans: Magazine pour la recherche cellulaire et l’anatomie microscopique , Bande 115, nr. 1, 1971, S. 94-99.
3. ↑ Volker Storch, Ulrich Welsch: À propos de la construction et de la fonction des nudibrancher-rhinophores . Dans: Magazine pour la recherche cellulaire et l’anatomie microscopique , Bande 97, nr. 4, 1969, S. 528-366.
4. ↑ K. Göbbeler, A. Klusmann-Kolb: Une étude ultrastructurale comparative des organes sensoriels céphaliques dans l’opisthobranchia (mollusque, gastropoda) . Dans: Tissu et cellule , Band 39, no. 6, 2007, S. 399–414, deux: 10.1016 / j.tice.2007.07.002 (PDF) .
5. ↑ W. B. Rudman et R. C. Willan: Opisthobranchia. Dans: P. L. Beesley, G. J. B. Ross und A. Wells (HRSG.): Mollusque: la synthèse sud. Faune d’Australie. 2. Volumes, CSIRO, Melbourne 1998, ISBN 978-0-643-05756-2, pp. 915-1035.
6. ↑ C. Grande, J. Templado, J. Lucas Cercera et R. Zardoya: Phylogénie moléculaire d’Euthynera (mollusque: gastropoda). Dans: Biologie et évolution moléculaires. Bande 21, no. 2, 2004, S. 303–313, deux: 10.1093 / molbev / msh016 .
7. ↑ Base de données de Mollusm sur l’océan Southern (Sombase) @d’abord @ 2 Modèle: lien / www.antarctica.ac.uk ( Page non plus disponible, recherchez dans Webarchien ) Info: Le lien a été automatiquement marqué comme un défaut. Veuillez vérifier le lien en fonction des instructions, puis supprimer cette note.
8. ↑ Bill Rudman: Aplysia gigantea sur Seaslugforum.net.
9. ↑ Institut national de la recherche sur l’eau et l’atmosphère: Limaces de mer toxiques .
10. ↑ Johannes Thiele: Manuel de mollusisme systématique . 2 volumes. 1929-1935; Traduction anglaise: R. Bieler et P. M. Mikkelsen (éditeur scientifique); J. S. Bhatti (traducteur): Manuel de malacologie systématique. Publ: Washington, D.C.; Bibliothèques de l’institution Smithsonian; Fondation nationale de la science; 1992–. Teil 1: Loricata; Gastropoda: Prosobranchia; TEIL 2: Gastropoda: Opisthobranchia et Pulmonata; Teil 3: Scaphopoda / Bivalvia / Cehalopoda; TEIL 4: Morphologie comparative / phylogénie / distribution géographique.
11. ↑ Winston F. Ponder et David R. Lindberg: Vers une phylogénie des mollusques gastéropodes: une analyse utilisant des caractères morphologiques. Dans: Journal zoologique de la Linnean Society. Bande 119, no. 2, 1997, S. 83–265, deux: 10.1111 / j.1096-3642.1997.tb00137.x
12. ↑ P. Bouchet et J.-P. Rocroi: Partie 2. Classification de travail du gastropoda. Dans: Malacologia. Band 47, S. 239–283, Ann Arbor 2005, ISSN 0076-2997 , Archive.org , ConchBooks, ISBN 978-3-92591972-5.
13. ↑ P. Bouchet und J.-P. Rocroi (Hrsg.): J. Faýdad, oiseau, oiseau, W. F. Ponder, Á. Valdow Odd A. Attendez: Classification et nomenclateur des familles de gastéropodes. Dans: Malacologie: Journal international de malacologie. Bande 47, Nr. 1–2, ConchBooks, Hackenheim 2005, ISBN 3-925919-72-4, ISSN 0076-2997 , http://www.vliz.be/vmdcdata/imis2/ref.php?refid=78278
14. ↑ G. T. Poppe et S. P. Tagaro: La nouvelle classification des gastéropodes selon Bouchet und Rocroi, 2005. 23 février 2006 Pdf ( Mémento des Originaux à partir du 27 septembre 2007 Archives Internet ) Info: Le lien d’archive a été utilisé automatiquement et non encore vérifié. Veuillez vérifier le lien d’origine et d’archiver en fonction des instructions, puis supprimez cette note. @d’abord @ 2 Modèle: webachiv / iabot / www.journal-malaco.fr
15. ↑ C. Great, J. Templade, J. L. Cervera und R. Zardoya: Relations phylogénétiques entre l’opisthobranchia (mollusque, gastropoda) basée sur les gènes mitochondriaux COX1, TMV et RML . Dans: Phylogénétique et évolution moléculaires . 33e année, 2004, S. 378–388 , est ce que je: 10.1016 / j.ympev.2004.06.008 .
16. ↑ G. Haszprunar: L’Hétérobranchia – un nouveau concept de phylogénie et l’évolution du gastropode supérieur. Dans: Journal of Zoological Systems and Evolution Research. Band 23, 1985, S. 15–37, deux: 10.1111 / j.1439-0469.1985.tb00567.x .