Embrygais somatique – Wikipedia

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Le Embryggense somaticienne est une méthode biotechnologique dans laquelle la formation d’un embryon de légumes est basée sur une cellule somatique. Ceci contraste avec l’embryogenèse cygotique normale, qui est initiée par la fertilisation d’une cellule d’oeuf. Un processus similaire qui fonctionne dans la nature est l’apomixis, une création de jeune fille si appelée dans laquelle un embryon est formé sans avoir une fusion de jouets à l’avance. [d’abord]

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Les cellules somatiques peuvent être obtenues à partir de l’hypocotyle, des gaines de feuilles ou des racines, par exemple. Des tissus hérités peuvent provenir de ces cellules, c’est pourquoi les plantes résultantes sont également appelées clones. [2] Bien qu’il n’y ait pas de zygote dans l’embryogenèse somatique, le point de départ du développement embryonnaire, de forts parallèles morphologiques peuvent être observés dans le développement et une plante fertile intacte est préservée dans les deux cas.
En plus du nom de l’embryon somatique, les noms sont également Embryoïde , Adventivembryo Ou simple Structure de type embryon commun. [2]

Certaines conditions préalables doivent être respectées pour une embryogenèse somatique réussie. D’une part, la cellule de départ doit avoir une compétence embryogène afin qu’une cellule somatique dans une cellule embryogène puisse être convertie, et il doit également y avoir un stimulus approprié qui déclenche le développement embryonnaire. Le tout doit fonctionner dans un environnement (milieu nutritif) qui permet ce développement.

Différents stades de développement sont différenciés dans l’embryogenèse somatique:

  • La structure sphérique du stade globulaire-une émerge d’une cellule somatique après une stimulation réussie.
  • Les kotylédons du stade cardiaque commencent à émerger de la structure globulaire. Ces exploits des deux côtés donnent à l’embryon une structure en forme de cœur.
  • Torpedo Stage-by Stiring l’hypocotyle, l’embryon caractérise une forme allongée.
  • Kotyledon Stage – Les Kotyledons sont plus prononcés et émergent en tant que tels.

Après avoir atteint la quatrième étape, l’embryon est appelé mûr. Le développement embryonnaire est terminé et l’embryon est désormais en mesure de former une plante intacte.

Fondamentalement, deux formes différentes sont différenciées l’une de l’autre dans l’embryogenèse somatique.

Embryggendees indirects [ Modifier | Modifier le texte source ]]

Avec l’embryogenèse indirecte, la formation de cals est initialement effectuée. L’induction d’un call peut être initiée en utilisant des hormones de croissance des plantes (synthétiques) telles que l’acide oxysé à 2,4-dichlorphen. [3] [4] [5] Ces auxines sont enterrées sur le milieu qui est utilisé pour cultiver les cellules. L’embryogenèse n’est suivie qu’après [6] . Avant la régénération d’une plante, le Kalli peut être utilisé comme étoile de transformation. Diverses méthodes peuvent être utilisées ici. Par exemple la transformation bioolistique [7] [8] , la transformation avec les agrobactéries [9] [5] [dix] [11] [douzième] [13] Ou la transformation à l’aide des aiguilles en cristal de carbure de silicium. [14] [15]

En raison de l’activité de division élevée du tissu des cals, l’embryogenèse indirecte conduit souvent à des variations somaclonales.

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Embryviewes directes [ Modifier | Modifier le texte source ]]

Avec l’embryogenèse directe, l’embryon est formé directement. Cela se produit généralement à partir de cellules parenchymatiques. [6] Avec l’embryogenèse directe, les variations somaclonales sont beaucoup moins courantes. Cependant, l’embryogenèse somatique directe n’a jusqu’à présent été décrite que dans très peu d’espèces. [d’abord]

Dans la recherche, les campagnes à effet de serre ou climat sont souvent un facteur limitant. Par conséquent, l’embryogenèse somatique est intéressante, car avec leur aide, un grand nombre de plantes, dans un petit espace et avec peu de matériau de départ, il peut être produit.

Les embryons somatiques pouvaient permettre une augmentation de masse clonale automatisée à l’aide de bioréacteurs. Cela serait particulièrement intéressé par le développement de graines artificielles. Les embryons somatiques sont encapsulés au stade de la torpille. L’oxyde de polyéthylène peut être utilisé comme matériau pour l’encapsulation [16] Ou un gel liquide [17] Trouver une application. Ces matériaux initialement utilisés étaient dus à de meilleures propriétés par des boules d’alginate de calcium [18] remplacé. D’autres optimisations ont été faites en ajoutant divers additifs [19] [20] Pour la régulation de l’activité osmotique (par exemple le saccharose) ou la vitalité des embryons (par exemple l’absence d’acide).

Contrairement à une graine de l’embryogenèse cygotique, les graines qui ont émergé de l’embryogenèse somatique n’ont pas d’endosperme, qui sert à fournir des nutriments pendant la germination. De plus, il n’y a pas de cas de semences fixes qui sert principalement de protéger contre le stress mécanique.

  1. ↑ un b Neumann K.H. ( 1995 ) Cultures de cellules et de tissus végétaux , Ulmer Verlag, Stuttgart.
  2. ↑ un b Hess D. ( 1992 ) Biotechnologie des plantes , Ulmer Verlag, Stuttgart.
  3. ↑ Ahmadabadi, M., S. Ruff, et al. ( 2007 ). “Un système de régénération et de transformation basé sur les feuilles pour le maïs (Zea Mays L.).” Recherche transgénique 16 (4): 437-448.
  4. ↑ Huang, X. Q. et Z. M. Wei ( 2004 ). “Régénération des plantes à haute fréquence par l’initiation des cals à partir d’embryons matures de maïs (Zea Mays L.).” Rapports de cellules végétales 22 (11): 793-800.
  5. ↑ un b Sidorov, V., L. Gilbertson, et al. ( 2006 ). “Transformation médiée par Agrobacterium du cal dérivé de semis.” Rapports de cellules végétales 25 (4): 320-328.
  6. ↑ un b Bhojwani S.S. Und Razdan M.K. ( 1983 ) Culture des tissus végétaux: théorie et pratique , Elsevier Verlag, Amsterdam.
  7. ↑ Frame, B. R., H. Y. Zhang, et al. ( 2000 ). “Production de maïs transgénique à partir de cals de type II bombardés: effet de la taille des particules d’or et de la morphologie des cals sur l’efficacité de la transformation.” Biologie cellulaire et développemental in vitro-Plant 36 (1): 21-29.
  8. ↑ Coup de pinceau, r., D. Backer, c’est vieux. ( 1997 ). “Transformation efficace du tissu scutellaire des embryons de maïs immatures.” Génétique théorique et appliquée 94 (6-7): 737-748.
  9. ↑ Frame, B. R., H. X. Shou, et al. ( 2002 ). “La transformation médiée par Agrobacterium tumefaciens des embryons de maïs à l’aide d’un système vectoriel binaire standard.” Physiologie végétale 129 (1): 13-22.
  10. ↑ Hiei, Y., S. Ohta, et al. ( 1994 ). “Transformation efficace du riz (Oryza sativa l) médiée par l’agrobacterium et l’analyse de séquence des limites de l’ADNm.” Plant Journal 6 (2): 271-282.
  11. ↑ Ishida, Y., Y. Hiei, et al. ( 2007 ). “Transformation médiée par Agrobacterium du maïs.” Protocoles de la nature 2 (7): 1614-1621.
  12. ↑ Ishida, Y., H. Saito, et al. ( 1996 ). “Transformation à haute efficacité du maïs (Zea Mays L.) médiée par Agrobacterium tumefaciens.” Nature Biotechnology 14 (6): 745-750.
  13. ↑ Tingay, S., D. Mceroy, et al. ( 1997 ). “Transformation d’orge médiée par Agrobacterium tumefaciens.” Plant Journal 11 (6): 1369-1376.
  14. ↑ Frame, B. R., P. R. Drayton, et al. ( 1994 ). “Production de plantes de maïs transgéniques fertiles par transformation médiée par les moustaches du silicium.” Plant Journal 6 (6): 941-948.
  15. ↑ Petolino, J. F., N. L. Hopkins, et al. ( 2000 ). “Transformation médiée par des moustaches de calleuse embryogène du maïs.” Plant Cell Reports 19 (8): 781-786.
  16. ↑ Kitto, S. L. et J. Janick ( 1985 ). “Production de graines synthétiques en encapsulant des embryons asexués de carotte.” Journal de l’American Society for Horticultural Science 110 (2): 227.
  17. ↑ Kitto, S. L. et J. Janick ( 1985 ). “Production de graines synthétiques en encapsulant des embryons asexués de carotte.” Journal de l’American Society for Horticultural Science 110 (2): 277-282.
  18. ↑ Liu, J. R., J. H. Jeon, et al. ( 1992 ). “Type sec de carottes (carota-carota 50) des graines artificielles.” Science Horticulturae 51 (1-2): 1-11.
  19. ↑ Timbert, R., J. N. Barbotin, et al. ( 1996 ). “Effet des prétraitements uniques et combinés sur l’accumulation de réserve, la survie et la germination des embryons somatiques encapsulés et déshydratés.” Plant Science 120 (2): 223-231.
  20. ↑ Timbert, R., J. N. Barbotin, et al. ( 1996 ). “L’amélioration de la survie des embryons somatiques carottes pendant la déshydratation lente, par encapsulation et contrôle de la déshydratation.” Plant Science 120 (2): 215-222.

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