Sargassum – Wikipédia

before-content-x4

Description de cette image, également commentée ci-après

Sargassum Sp. pokazanie pęcherzyków gazowych

after-content-x4

Gatunek muzyczny

Sargassum , The Sargasse , to rodzaj brązowych glonów z rodziny SARGASSACEAE .

Nazwa płciowa Sargassum Pochodzi od portugalskiego słowa „Sargaço” lub włoskiego „Sargasso” lub hiszpańskiego „Sargazo”, co oznacza „Varech”.

Słowo, potwierdzone co najmniej 1597 r., Jest powiązane z słowem „Mar dos Sargaços”, morze położonym na zachód od Wysp Kanaryjskich „Tak nazywany przez Portugalczyków, z powodu Sargasso lub Ruszy, której jest pokryty” [[[ Pierwszy ] W [[[ 2 ] .

Powodzie niektórych gatunków tropikalnych mogą osiągnąć kilka metrów długości (do 12 metrów). Można je naprawić na dole przez „twardy” tallus, ale niektóre sargasy czasami żyją wyłącznie; Głównie w morzu o tej samej nazwie, w Oceanie Atlantyckim.

after-content-x4

Według hydrografu i meteorologa Xix To jest Century Matthew Fontaine Maury, autor Geografia fizyczna morza , nazwa „Sargasse” pochodzi od hiszpańskiego słowa gronorost [[[ 3 ] co oznacza Varech. Opisuje Sargassum jako „Varech-entueur” i „Bass Holder”, który głównie tworzy „ogromną ławkę” Morza Sargassusa przez koncentrację glonów przez okrągłe prądy Atlantyku.

Jules Verne in 20000 lig pod wodą Sprawia, że ​​jego bohater mówi, że dzieli opinię Maury i że był w stanie przestudiować to zjawisko w tym specjalnym środowisku, w którym statki rzadko przenikają. Nad nami unoszą się ciała z całego pochodzenia, ułożone na środku tych brązowawych ziół, drzewa drzew rozdarte z Andów lub Góry Skalistych i unoszone przez Amazonię lub Mississippi, wiele wraków, kolan skittles lub kadłubów, granic granicznych i tak ważnych Down przez skorupy i anitify, że nie mogliby podnieść się na powierzchnię oceanu. A czas pewnego dnia usprawiedliwi tę drugą opinię Maury, że materiały te, w ten sposób zgromadzone przez wieki, mineralizują się pod działaniem wód, a następnie utworzą niewyczerpany węgiel. Precious Reserve, która przygotowuje opatrzoną naturę do tego momentu, gdy mężczyźni wyczerpali kopalnie kontynentów. »»

Istnieje kilkadziesiąt gatunków sargassum, które są częścią rzędu Fucales , glony, które – z słabo zrozumianych powodów – są (dla większości gatunków) w silnej i szybkiej regresji od końca Xx To jest wiek na wybrzeżu europejskim (a zwłaszcza we Francji). Nie wiadomo jednak, że ewolucja i stan wolnych populacji Morza Sargasse, który może również cierpieć z powodu wielu odpadów wyrzuconych na morze.

Sargassum, zarówno pochodne, jak i ustalone na podłożu, są w każdym przypadku utrzymywane na powierzchni lub w pobliżu powierzchni przez zmienne „pneumatocyty” (kule wypełnione gazem wytwarzanym przez glony).

Pod morzem sargassów uważa się, że węgorze (w tym węgorz Europy) są (na głębokości), aby położyć miliardy jaj, które rodzą obfite larwy, które zamieni się w obywatelski, zanim dołączą do świeżych wodów gdzie spędzą życie w dojrzałości seksualnej, która sprowadzi ich z powrotem do Sargasses.

Wydaje się przede wszystkim wykonane przez fragmentację kępek, przez mnożenie wegetatywne, ale jajowate (komórki macierzyste linii zarodkowej) i antéréréridies istnieją w specjalnych narządach [[[ 4 ] .

Mówi się, że większość sargasów jest holopelagiką (rozwijającą się na powierzchni przez cały cykl życia, bez potrzeby przylegania do twardego podłoża). Ich pływaki (pneumatocysty) utrzymują swoje liście narażone na światło, teraz ich zdolności fotosyntezy i wysoką wydajność. Wiele sargassum ma szorstką konsystencję i lepki śluz (obrońca przed ultrafioletami słonecznymi), które łączą je w pływających klastrach, czasami tworząc tratwy roślinne, solidne, ale elastyczne, przystosowane do ruchów pęczniejących i silne prądy morskie. Te masy pochodne, gdy są ważne, stanowią siedlisko i schronienie dla wielu bezkręgowców (145 gatunków) i kręgowców morskich (127 gatunków), a także dla dziesięciu gatunków endemicznych ( Aktor, minuty samolotowe …) Że nie znajdujemy nigdzie indziej i jesteśmy w stanie ćwiczyć biomimikę, aby zakamakować się w tych „lasach alg” [[[ 5 ] W [[[ 6 ] .

Les Sargasses. Sargassum bacciferum Ag. Année de publication : Extrait de : Christophe Colomb vu par un marin (Page 126)

1928, wyciąg z: Christopher Columbus widziany przez marynarza (strona 126)

Archipelag Keys (Floryda) i jego około 1700 wysp są znane ze swoich szczególnie gęstymi przybrzeżnymi populacjami Sargasses, a także z pływających tratwów glonów (Gulfweed, opisane przez Christophera Columbus).

Starożytni autorzy mówili o morzu Sargassum złożonym z ogromnych bieżni, co czyni nawigację, prawie niemożliwą, zatrzymując statki, które przydały się tam. Albo te opisy były silnie przesadzone z bardzo lokalnych zeznań, albo były czystym romantycznym wynalazkiem, albo od tego czasu te glony [[[ 7 ] I to morze już nie istnieje.

Dwa gatunki ( Pływanie I S. pływające ) to holopélagiki, to znaczy wykonywanie całego cyklu życia w planktoniczny i powierzchniowy sposób, zgodnie z prądami, wiatrem i źródłami składników odżywczych

Pelagiczna ławka Sargassum o średnicy około 45 kilometrów („sfotografowano” Przez instrument satelitarny Meris przewidziany u wschodniego wybrzeża Stanów Zjednoczonych na północnym Atlantyku. Łata jest wyśrodkowana na 35 ° 45’N i 66 ° 21’W

Brown Tide in Barbados (maj 2018)

Strasty są źródłem stężenia problemu stwarzania biomasy podczas rozkładu (w szczególności emanacji siarkowodoru)

Korces Lambis (jeden z naturalnych konsumentów Sargasse [[[ 8 ] ). Przechodzenie Lambis nie jest przyczyną huśtawek (wylesianie Amazonki, źródło erozji i wymywania składników odżywczych w kierunku morza), ale może się do tego przyczynić.

Rozkład sargassów i jego odmian jest obserwowany i badany przynajmniej od lat dwudziestych XX wieku na Zachodnim Atlantyku [[[ 9 ] W [[[ dziesięć ] W [[[ 11 ] W [[[ dwunasty ] , w szczególności dlatego, że Sargassum zafascynowało pierwszych odkrywców, a także biologów ( Pływanie I S. pływające są jedynymi gatunkami, które stały się całkowicie holopélagiki, które rozmnażają się wegetatywnie, nigdy nie przywiązując się do dna morskiego podczas cyklu życia; Wykazano również, że pływające zielnikowe utworzone przez te dwa gatunki, czasem setki kilometrów kwadratowych to oazy, jaja, schroniska i odżywianie wielu innych gatunków (w szczególności ryby i skorupiaki) [[[ 13 ] .

Dokonano kilku mesingerpretacji (oceny ilościowe dokonane w tym samym miejscu w różnych porach roku dają bardzo różne wyniki, co mogło w pewnym przypadku uwierzyć w regresję biomasy alg, co czyni to w latach 80. XX wieku, badacze wciąż kwestionują znaczące widoczne zmiany w zakresie pozornych zmian w ich biomasa [[[ 14 ] W [[[ 15 ] ).

W 2006 r. Badanie satelitarne ławek Sargassum umożliwiło rozwiązanie sprzecznych informacji i podkreśliło znaczące stosy sargasów w miejscach, w których nie miały być obecnych, w szczególności w Zatoce Meksykańskiej [[[ 16 ] .

W 2011 r. Bezprecedensowa pierwsza fala drenażu dotknęła obszaru Karaibów. Złoża przybrzeżne czasami przekraczają grubość metra; Pułapią żółwie morskie i napełniają powietrze z smrodu wywołującego zgniłe jajo na znacznej części antylów. Od tego czasu zjawisko to miało tendencję do pogarszania się, a w 2018 r [[[ 17 ] . Francuskie Indie Zachodnie przechodzą ogromne uderzenie Sarffassum pływa I Pływak Sarffassum [[[ 18 ] W [[[ 19 ] W [[[ 20 ] W [[[ 21 ] (Od 20 000 do 40 000 ton sargasów tylko na wybrzeżu Gwadelupy) [[[ 22 ] .
To bezprecedensowe zjawisko dodaje jego wpływu do zielonych przypływów lokalnie obserwowanych od końca lat 80. XX wieku, z powodu glonów gatunku Enteromorpha które roiły się sezonowo z powodu zanieczyszczenia azotu, głównie na początku lat 90. XX wieku [[[ 23 ] .
Może to zaostrzyć fakt, że jeden z konsumentów Sargassusa, Lobatus Giant (zwany lampa w języku francuskim Indie Zachodnim) wiele się regresuje od lat 60. XX wieku, z powodu przełowienia [[[ 24 ] i być może zanieczyszczenie ze względu na stosowanie przeciwdziałania lub chlordecone [Ref. niezbędny] .

. Lobatus Giant Dorośli wydają się jeść obojętnie w dzień iw nocy, co nie jest w przypadku larw Veliger i nieletnich w wieku poniżej roku. Te ostatnie, o ile mierzą mniej niż 50–100 mm Pokaż fototaksję i negatywną geotaksję [[[ 25 ] I zachowaj endogeus dobowy styl życia i idź do jedzenia na powierzchni osadu tylko raz po nocy [[[ 26 ] ; Hodowcy zbierają jaja na płytkiej głębokości (3-18 metrów) [[[ 27 ] Następnie larwy znajdują się na płytkiej głębokości (od 0 do 1 metra głębokości), gdzie i kiedy woda jest spokojna. To tylko ponad 100 mm że zaludnili płytkie dna morskie. Następnie tworzą bardzo ważne sezonowe agregaty, a następnie są bardzo podatne na działania rybackie [[[ 28 ] . Tutaj zdobędą swoją dorosłą formę. Gatunek ten znacznie powrócił we francuskich Indiach Zachodnich od lat 60. XX wieku, prawdopodobnie z powodu przełowienia, które pod koniec lat 80. XX wieku, zwłaszcza badane przez Ifremera [[[ 24 ] .

Od początku lat 60. znane są co najmniej dwa gatunki ryb koralowych z tropikalnego zachodniego Atlantyku, od wczesnych lat 60. XX wieku (Moore 1962) (biorąc pod uwagę ich miskę z jedzeniem): Kyphosus Sectatrix I K. Siecior [[[ 29 ] .

W 2011 r. Zakres tych glonów nagle się zmieniła [[[ 30 ] , z powodów wciąż słabo poznanych w 2018 roku [[[ 17 ] . W przeciwieństwie do tego, co było na początku [[[ trzydziesty pierwszy ] , Drugie Sargassusa na antylach nie pochodzą z Morza Sargassusa; Pokazuje to teledetekcja dzięki obrazom satelitarnym (średni spektrometr obrazowania posiłków [[[ trzydziesty pierwszy ] ) i spektroradiometr obrazowy o rozdzielczości średniej MODIS [[[ 32 ] ) Spraw, by Atlantyk i Zatoka Amazonka [[[ 30 ] . Od 2011 roku wykazali ogromną liczbę pływających roślin, prawdopodobnie jak Sargassum , powstały z wybrzeża Brazylii i po raz pierwszy skoncentrowały się na szerokościach północnych o powierzchni około 7 ° i długości geograficznej 45 °, daleko na południe od ich normalnego siedliska. W lipcu rozszerzenie tej populacji dotarło do wybrzeża afrykańskiego na wschód, a małe antylles i karaby na zachodzie [[[ 30 ] .

Czerstsze modelowanie podróży tych ogromnych ławek glonów (dostępne w 2016 r.), Pokazuje dla każdego ogromnego zdarzenia, które jest źródłem innym niż morze Sargassum, prawdopodobnie powiązane z wkładem Amazonii [[[ 17 ] ; Te glony rozprzestrzeniają się na morzu dzięki wkładowi składników odżywczych (fosforan, azotanu) spowodowanych intensywnym rolnictwem i większym wymywaniem gleby, po rosnącym wylesianiu Amazonii [[[ 33 ] W [[[ 34 ] . Ale inne czynniki, w tym możliwa zmiana prądów morskich w krążeniu termohalinowym w ” Północna strefa recyrkulacji „Lub„ Nerr ” [[[ 35 ] ), zniszczenie namorzyn ujścia Amazonki (które pogarsza bezpośrednie uwolnienie w oceanie). Zjawisko „Lotki pyłu z Sahary” (bogate w żelazo i fosforany) może również promować ich rozwój tratwy Drugie w kierunku Karaibów.
Nowy „region źródłowy” tych glonów pelagicznych jest otoczony prądem morskim obracającym się w kierunku igieł zegarku, który uwalnia dywany glony unoszące się z Ameryki Południowej do Afryki z Zachodu. Od stycznia do maja ta pętla zatrzymuje się, a przepływy glonów opuszczają ten obszar w kierunku Karaibów. Na całej ich ścieżce rosną te pływające masy Sargassusa [[[ 17 ] . Selon jest [[[ 36 ] Jest to rzeczywiście nowe zjawisko, ponieważ żadne dane, w szczególności satelity przed 2011 [[[ 17 ] .

Zjawisko to ma znaczące konsekwencje ekonomiczne, wpływając na turystykę, ponieważ wymaga zamknięcia dostępu do niektórych plaż i niewygodnych turystów. Te brązowe przypływy mogą również zaszkodzić połowom, pomagając w tworzeniu obszarów morskich, które zmarły przez anoksję, ze szkodą dla wielu gatunków ryb, koralowców, skorupiaków … glony te wpływają na ekosystem, zapobiegając dostępie do żółwi morskich w celu uzyskania dostępu do plaż, a następnie przez Zmniejszając szanse, że młode mogą dołączyć do morza. Wpływają one na zdrowie publiczne i jakość życia: miejscowa populacja narzeka na podrażnienie oka, ból gardła i uszy oraz nudności, spowodowane przez siarkowodór, który – poza pewnym stężeniem – blokuje oddychanie komórkowe. Pływanie w ławkach Sargassum może powodować swędzenie skóry z powodu obecności hydries ( Aglaophenia sp.) [[[ 37 ] . Wreszcie, zbieranie tych glonów wymaga obfitej siły roboczej, jeśli odbywa się to ręcznie, lub znaczące środki finansowe, jeśli używane są roboty ziemne.

Ponieważ oryginalne źródło Sargassum na Karaibach jest znane i że istnieje satelita [[[ 38 ] , wdrożono systemy zbierania morza, w szczególności użycie tam i łodzi pickupowych [[[ 39 ] W [[[ 40 ] .
W połowie 2018 r. Wybrzeże francuskich antylles, Barbados i Puerto Rico są już bardzo dotknięte, ale problem nie wpływa tylko na duże i małe Indie Zachodnie. Dalej na północ, Teksas, który ledwo wraca do zdrowia po gwałtownej burzy, jest dotknięty, a Cancun w Meksyku ocenia za 900 dolarów amerykańskich koszty czyszczenia metra wybrzeża.

Biolodzy odkryli, że większość sargasów, które znały od 2011 roku u ujścia Amazonii, przedstawia większą formę ujścia Amazonii niż te z wodorostów wodorostów. W 2018 r. Zespół badał, jeśli ta „forma” była historycznie rzadka w strefie tropikalnej, czy też jest odrębnym gatunkiem i które czynniki sprzyjały jego rozwojowi od 2011 roku.

Od końca 2010 roku, w szczególności na studiach, w szczególności międzynarodowych, mających na celu zwalczanie tego problemu, a pierwszy międzynarodowy szczyt odbywa się w Guadelupie na ten temat [[[ 41 ] W [[[ 42 ] .

Niektóre sargasy mają właściwości, które mogą wytwarzać gatunki inwazyjne, gdy zostaną wprowadzone do nowych biotopów [[[ 43 ] W [[[ 44 ] . Mają odporność, szybki tempo wzrostu, wysoką szybkość rozmnażania i wysoką zdolność propagacji wegetatywnej. Kawałki posiekane przez śmigierze dają nowe glony o doskonałej zdolności dryfowania na duże odległości.

Sargassum muticum Na przykład wprowadzono w Europie z Japonii (na przykład wykryty w 1995 r. W Strangford Lough [Down County, Irlandia Północna]) po imporcie ostryg Guernsey, które same w Japonii. Próbki Herbarium są teraz przechowywane w Muzeum Ulster (numery katalogowe: F11241 – F11242; F11182 – F11185). Gatunek został znaleziony na Wyspach Brytyjskich na wyspie Wight w 1973 roku. Uważa się, że wygrał cały świat wraz z transportem i wprowadzeniem japońskich ostryg w różnych częściach świata, w tym Francji. Bez roślinożerców z oryginalnego biotopu może tworzyć duże dywany, które eliminują lokalne gatunki, kleje, zawracają uwagę łowić, pyszne wód, pułapkowanie resztek itp.

Od 2011 r. Duże warstwy Sargassus rozszerzały się w ten sposób na wysokie morze na północnym wschodzie Ameryki Południowej, a także do Afryki. Szacuje się, że w 2018 r. Rekordowa biomasa w wysokości 20 milionów ton skolonizowała tę część oceanu (10 razy więcej niż w 2011 r.) [[[ 45 ] .
Zdjęcia satelitarne poprzez monitorowanie poziomów chlorofilu A W wodach powierzchniowych sugeruje, że to zjawisko jest spowodowane napływem składników odżywczych.
Składniki odżywcze (w szczególności azotany, fosforany i węgiel pochodzą z naturalnych źródeł: upwelling, które są wysokim wzrostem wody w składnikach odżywczych, które można znaleźć wzdłuż zachodniego wybrzeża Afryki Afryki [[[ 45 ] .
Ale dziś działalność człowieka, a po drugie erozja gleby, którą powodują, przynoszą na morze ogromną ilość minerałów i składników odżywczych. Rzeka Amazon stałaby się pierwszym źródłem: w pióropuszu na morzu, od 2009 r. Wskaźnik chlorofilu wzrósł gwałtownie, prawdopodobnie po wciąż zwiększonym wylesianiu i utraty nawozu rozprzestrzeniania się na soję lub produktach sojowych lub innych. Ogromne przybycie Sargassum na tropikalnych plażach mogą stać się nowymi badaczami strachu [[[ 45 ] .

Mikroalgi i/lub makroalgi są używane przez ludzi prawdopodobnie, ponieważ prehistoryczne, jako żywność, zmiana gleb lub nawozów, a ostatnio do innych zastosowań, w branży azjatyckiej azjatyckiej [[[ czterdzieści sześć ] W [[[ 47 ] , oszacowane w 2004 r. Do kilku miliardów dolarów [[[ 48 ] . Produkcja światowych glonów wzrosła z <2 do 19 milionów ton świeżej wagi w latach 1970–2010 [[[ 49 ] , ale, z wyjątkiem niektórych gatunków w regresji w niektórych regionach świata (na przykład Fucus w Europie) nadal uważamy je za niewykorzystane zasoby naturalne [[[ 50 ] .

Sargasy są uprawiane i zbierane na przykład na morzu, w Korei Południowej [[[ 51 ] . John J. Milledge i al. wykazał, że w 2028 r. Odsalanie przez mycie słodkowodne nie wpływa ani na szybkość lipidów, ani na białko, że nieznacznie zwiększa zawartość azotu w wodorostach (przechodzi z 3, 85 do 4,77% suchej masy) [[[ 52 ] .

Inne zastosowania istnieją lub są możliwe, na przykład w przypadku projektów wyceny przewidzianych na antyle [[[ 53 ] W [[[ 54 ] :

  • wycena całości lub części wielu aktywnych składników (w tym interesu farmaceutycznego) [[[ 55 ] treść Sargasses, wiedząc o tym „Makroalgi są główną grupą żywych istot fotoutotroficznych znanych jako potencjalne źródło wtórnych metabolitów” w tym związki fenolowe, pigmenty i polisacharydy. Fitoterapia wykorzystuje już niektóre gatunki uprawnych sargasów. Chińscy ziołowie często przepisują je w proszku, sprzedawane w saszetkach z papieru 0,5 gramu, rozcieńczają gorącą wodę i piją jak herbata, w razie potrzeby, nadmiar śluzu, który powstaje na powierzchni. Do tego zastosowania są one powszechnie nazwane Herbata Sargassum ;
    Sargasy są bogate w przeciwutleniacze [[[ 51 ] Polisacharydy (w szczególności siarczan) [[[ 56 ] , Związki fenolowe i potencjalne źródło plastobox, florotanin, fukoksantyny, fucoidów, kwasu sargachinowego, sargachroménolu, sterydy, terpenoidów i flawonoidów [[[ 57 ] W [[[ 58 ] .
    Wyciągi z Sargassum (w tym Pływanie ), wykazali znaczny potencjał terapeutyczny, co sugeruje, że rodzaje płci Sargassum są interesującymi źródłami nowych cząsteczek dla bionotechnologii lub do wytwarzania funkcjonalnych składników żywności, na przykład farmaceutycznych (przeciwutleniaczy) przydatnych do zapobiegania i/lub leczenia różnych zaburzeń [[[ 59 ] W [[[ 57 ] W [[[ 60 ] .
  • Te glony, z zastrzeżeniem środków ostrożności (bezpieczeństwa biologicznego), dzięki ich nierzeszkom biosyntezy, mogą być wykorzystane jako «Nanobiofactories» produkować w szybszym i bardziej „zielonym” sposób nanocząstek złota, srebrnego lub metalu (Cuo, ZnO); Zwłaszcza, że ​​niektóre z ich wtórnych metabolitów są czynnikami redukcyjnymi, które mogą stabilizować nanocząstki i/lub zwiększać swoją biokompatybilność, umożliwiając rozszerzenie ich zastosowań (w szczególności przeciwdrobnoustrojowe, ale także przeciwutleniacze, nanoencapsulacja, nanokompozyty lub biokaptery, Niemniej jednak ich toksyczność jest kluczowym czynnikiem, który należy wziąć pod uwagę, aby odpowiednie przepisy mogą zagwarantować bezpieczne wykorzystanie metalicznych nanocząstek » Przywołała Paula Barciela i Al. w 2022 r [[[ sześćdziesiąt jeden ] .
  • metanizacja Sargassum (i innych glonów) [[[ 62 ] W [[[ 63 ] , po wstępnym przetwarzaniu [[[ sześćdziesiąt cztery ] , umożliwiłoby czerpanie z niej energii. Takie jest projekty Evergaz w ramach inicjatywy Mieszanego Związku Elektrycznego Gwadelupy. Rzeczywiście, materia organiczna nie trawiona przez bakterie mogła zostać przekształcona w biogaz [[[ 65 ] .
    Badanie wykazało również, że „współczynnik”, w analizie, równej części gnojowicy Sargasse i wieprzowej poprawia wydajność metanizacji i wytwarza pozostałość (trawienie), którego stosunek C/N (16,8) jest bardzo interesujący dla rolnictwa [[[ 66 ] . Według Johna J. Milledge i Al. (2018), wstępne leczenie glonów przez pranie słodkowodne zwiększa poziom wilgotności glonów (który następnie wzrasta z 85,6% do 89,1%), ale ostatecznie zmniejsza zawartość popiołu (co następnie wzrosło o 32,7% o suchą masę, do suchej masy, do suchej masy, do suchej masy, do suchej masy, do suchej masy, do suchej masy, do suchej masy 30,6%dla umytych glonów) oraz zmniejszając szybkość soli (która wzrasta z 51,5%, do 42,5%) [[[ 52 ] . Po odsalaniu i wysuszeniu moc kaloryczna glonów znacznie wzrasta (ze względu na jej najmniejszą zawartość popiołu; 11,5 do 12,6 kJ g – 1 w suchych sprawach) [[[ 52 ] . Mycie zwiększa straty odcierania podczas kiszonki, całkowite straty odcieków rosną po myciu (12,7–25,2%) [[[ 52 ] , ale nieco zmniejsza wydajność metanu i opóźnia produkcję w metanizer; Wydajność, która wynosi około 0,225 l CH4 g – 1 vs dla nieuczonej próbki biomasy glonów (z zastrzeżeniem trawienia beztlenowego 28 dni podczas testów) wynosi 177 l CH4 g – 1 vs dla przemytej próbki; oraz John J. Milledge i al. (2018) zauważają również, że mycie opóźniło produkcję biometanu; Umożliwia jednak uzyskanie mniej słonych pozostałości metanizacji [[[ 52 ] . Wydajność pod względem produkcji metanu jest lepsza po umyciu świeżą wodą niż po umyciu wody morskiej lub w ramach wstępnego [[[ 52 ] .
    Konsorcjum ( Macrobiocrude ) powstał w Wielkiej Brytanii, a z 2,3 milionami szterlingowych książek Rady ds. Badań Inżynierii i Nauk o fizyce (EPSC) to interdyscyplinarny projekt mający na celu zaproponowanie zintegrowanego sektora leczenia dostaw i makroalgów z niekończącą się zrównoważonymi biopaliwami z alg (w tym makroalgi). Taka produkcja może, na marginesie lub lokalnie pomóc w zmniejszeniu ciężaru kryzysu energetycznego [[[ sześćdziesiąt siedem ] ;
  • Przewiduje się również „biohydrogen” (lub „zielony wodór”) [[[ 68 ] , co może na przykład wytworzyć dzięki procesie rozpadu molekularnego związanego ze stosowaniem ultradźwięków [[[ 69 ] ;
  • Kompostowanie może zwiększyć pewną ilość sargassum (dla dostarczania potasu, jodu i innych elementów śladowych itp.);
  • Wcześniej odsłonięte [[[ 52 ] , są one możliwym (i już doświadczonym) źródłem biopaliw/biopalił (gazowych lub cieczy);
  • algina [[[ 70 ] może karmić przemysł spożywczy lub być wykorzystywany do produkcji bioplastii;
  • Bioraffineria: przewiduje się cząsteczki zainteresowań farmaceutycznych i kosmetyków [[[ 71 ] W [[[ 72 ] . Badanie (2020) wykazało, że dzięki bioaktywnym cząsteczkom obecnym w sargasse możliwe jest, poprzez proces z wykorzystaniem kwasu tetrachlorouraurowego (HACL4), w celu wytworzenia złota sferycznego, stabilnego, 7 i 20 nM nanocząstek głównie z średnicy, z przeważnie średnicy, od średnicy, głównie o średnicy z 7 i 20 nm Sargassum cymosum , mniej toksyczne i mniej kosztowne niż inne metody [[[ siedemdziesiąt trzy ] ;
  • Wycena w biowętku lub wodorodzie, prawdopodobnie zastąpi drewno drewna lub aktywnego węgla dla niektórych jego funkcji, w celu poprawy gleby (w szczególności niektórych zanieczyszczonych gleb) [[[ 74 ] ;
  • Wycena w poprawkach lub nawozach bogatym w jod i inne elementy śladowe oraz w składniki odżywcze, które mogą promować ustalenie cechy wybrzeża Dunara lub Mangrove itp.);
  • Wydaje się również, że możliwe jest wyprodukowanie papierowej miazgi opartej na Sargassum [[[ 75 ] ;
  • Zawierające 8% białka brutto i 39% węglowodanów, witamin, jodu i niezbędnych kwasów tłuszczowych, te sargasy mogą również, po weryfikacji, że nie biokoncentrują niektóre zanieczyszczenia, wchodzić do pary zwierząt, bydlęcy, świni lub koziej [[[ 76 ] .
    Dodatki żywnościowe oparte na glonach mogą ograniczać produkcję metanu przez metanogenne bakterie między initytyjską [[[ 77 ] .

Pływające lub świeżo osierocone sargasy można przechowywać stosunkowo niedrogie metody: suszenie słoneczne lub kiszonka [[[ 78 ] .

Skład Pływanie i S. muticum są podobne [[[ 79 ] .

Hamulce waloryzacyjne [[[ modyfikator |. Modyfikator i kod ]

Wśród tych hamulców występują problemy ekonomiczne, energetyczne, techniczne i infrastruktury, w szczególności:

  • wysoka zawartość soli i w wodzie (trudna do wydobycia);
  • Fakt, że niektóre pasma mogą zawierać sargasse znacznie zanieczyszczone przez węglowodory, metale ciężkie i toksyczne metalo (np. Arsen, kadm… [[[ 80 ] W [[[ 81 ] Ogranicza niektóre projekty do użytku, na przykład jako sponsor lub jedzenie.
  • Brak infrastruktury tradycji, zbierania i/lub leczenia oraz przemysłu lub sektorów już używających tych glonów (w antylach jak w Afryce) utrudnia rozwój projektów (wszystko pozostaje do zrobienia).
  • Sezonowość i nieubezpieczony zrównoważony rozwój pasm obejmuje metody, środki i miejsca ochrony glonów w celu ciągłej dostępności tego surowca; i mycie / kruszenie makroalgi, zalecane, wymaga energii o znacznych ilościach [[[ 82 ] , który proces droższy niż ten, który wykorzystuje mikroalgi.
    Mycie zużywa świeżej wody (konieczność czystości dla niektórych zastosowań), podczas gdy obszary osiołowe są często regionami, w których brakuje świeżej wody.
  • Idealnie, przynajmniej w obszarach o ekologicznym i turystycznym, konieczne byłoby możliwość wykorzystania prawie całej nieudanej biomasy [[[ 83 ]
  • Oraz, jeśli odpowiednia infrastruktura lub środki istnieją na niektórych wyspach lub liniach wybrzeżnych, rzadko są one natychmiast dostępne w miejscach drugnych, szczególnie na biednych wyspach, które potrzebowałyby jej najbardziej (na przykład Haiti). Dostawa takich sektorów byłaby również nieciągła (bardzo powiązana z pogodą) [[[ 84 ] , problem, który można rozwiązać poprzez suszenie lub przechowywanie kiszonki [[[ 83 ] .
  • Kiszonka makroalg była przedmiotem testów, których wyniki są nadal sprzeczne. Może to być źródłem uciążliwości węchowych, ale także strat w postaci ścieków (10 do 28%? [[[ 85 ] lub wcześniej zwiędle, ale bez docierania do rozpoczęcia gnicia [[[ osiemdziesiąt sześć ] .
    Dla 5 badanych gatunków makroalg straty lotnych stałych (VS) z powodu kiszonki były mniejsze niż 3-19% biomasy stałego lotnego pochodzenia [[[ 85 ] (ale może osiągnąć 22,5% w przypadku czerwonych glonów Palmaria Palmate i 22% dla brązowych glonów, Typ laminaria ) [[[ 83 ] .
    Les strates de leixiviat (np.: 150 ml kg-1 dla Palmaria Palmate i 60 ml kg-1 dla Typ laminaria odpowiadają formie wysuszenie Podczas kiszonki [[[ 83 ] . Podczas kiszonki Sargassum muticum Cała objętość odcieków (68 ml kg-1) była nieco wyższa niż mierzona na laminarniach, ale gdy alga została posiekana w fragmencie od 1 do 2 mm, spadła do 27 ml kg-1 84, z suchym Straty materiałowe (<2,7–8,7%) [[[ 83 ] . Po kiszonku, S Muticum jest bardziej suchy, ma niższą zawartość popiołu i zawiera znacznie mniej soli (NaCl), z niewielką zmianą poziomów C, H i N materii organicznej, i bez statystycznej różnicy między HHV suchej materii biomasy S. Muticum przed i po kiszonce [[[ 85 ] W [[[ 83 ] .
    Podczas kiszonki prawie cała siarka organiczna jest wyeliminowana z biomasy [[[ osiemdziesiąt siedem ] , a w warunkach beztlenowych związki organiczne zawierające siarkę rozkładają się przez bakterie, tworząc związki pośrednie zawierające siarkę, które ostatecznie tworzą siarkow wodór przy użyciu niskiej masy tłuszczowej masy tłuszczowej o niskiej masie niskobolowej jako dawcy elektrony [[[ 88 ] W [[[ 89 ] . Bakterie redukujące siarkę obecne w kiszonce [[[ 89 ] W [[[ 90 ] są potencjalną przyczyną utraty siarki w S. muticum Enlile. Doniesiono również, że niektóre bakterie mlekowe metabolizują aminokwasy] zawierające siarkę [[[ 91 ] , a zatem może przyczynić się do degradacji organicznych związków siarki. Surowce o niskiej zawartości popiołów, soli i siarki są zatem uprzywilejowane zarówno do zgazowania, jak i DA, a zatem kiszonka może zapewnić dalsze zalety w produkcji biopaliw. Produkcja H2S podczas kiszonki stanowi zagrożenie dla zdrowia, które należy wziąć pod uwagę pod względem bezpieczeństwa operacyjnego.
    Całkowita utrata energii dla pomostowej biomasy S. muticum wynosił 0,2 do 8% [[[ osiemdziesiąt siedem ] . Straty energii spowodowane kiszonką glonów są stosunkowo niskie, a zatem może być energetycznie opłacalną metodą ochrony glonów do produkcji biopaliw [[[ 92 ] .

Wszystkie te „ograniczenia” firmy hamulcowe do inwestowania w te projekty, nawet jeśli wiemy, że kiszonka i zgazowanie stanowią potencjalne rozwiązanie kilku z tych problemów [[[ 83 ] , techniczne inoss w dziedzinie zielonej chemii (a zwłaszcza zielonych rozpuszczalników), takich jak ekstrakcja cieczy jonowa [[[ 93 ] (na przykład testowany (2022) w celu wyodrębnienia chlorofilu [[[ dziewięćdziesiąt cztery ] ) lub przez głębokie rozpuszczalnik eutektyczny [[[ 95 ] (toksykologicznie bezpieczniejsze i czystsze technologicznie) może poprawić pewne plony [[[ 96 ] , użycie mediowanej powierzchni przez ultradźwięki [[[ 97 ] .

Różni się w zależności od gatunku, ale może być szerokie: Sargassum muticum Do obszaru dystrybucji rozciągającego się od Nanaimo (Kolumbia Brytyjska) do Basse-California (Stany Zjednoczone).

Kilka gatunków Sargassus znajduje się wszędzie w tropikalnych regionach świata; Często są makrofitami. Najbardziej widoczne są blisko żeber, gdzie rosną na podłożu lub w sposób pochodny w pobliżu raf koralowych. Rośliny rosną subtelnie (za obszarem przełomowym) z koralami, na skałach lub na bardziej osłoniętych obszarach. W niektórych przypadkach, w szczególności w Sargasses Sea, populacje Sargassum unoszą się wyłącznie.

W Europie znajdujemy w morzu, mniej Sargassum, po tym, jak ich długi dryf niosł przez strumień Zatoki Perskiej; Wzdłuż wybrzeży Wielkiej Brytanii we Francji, ale także Skandynawii (Morze Bałtyckie, Archipelag Heligoland), Holandia, Irlandia, na Półwyspie Iberyjskim. Istnieją również niektóre gatunki na Morzu Śródziemnym (Włochy i Adriatyc), a także w Japonii, Korei, Chinach i Alasce [Ref. niezbędny] .

Według Algebaza (27 lutego 2015 r.) [[[ 98 ] :

  • Sarffassum Abbottiae G.C.Tronron, Jr.
  • Sargassum acinacifolium Setchell i n.l.gardner
  • SARGASSUM ACINACIFOREE Góra
  • Sargassum Acinaria C.agardh
  • Sargassum acinarium (Linnaeus) Setchell
  • Sargassum agardhianum Farlow
  • Sargassum agaviforme Tseng & Lu
  • Sargassum albemarlense W.R.Taylor
  • Sargassum albertisii Zbieracz
  • Sarffassum Alternate-Pinnate Yamada
  • Sargassum Amabile Yamada
  • Sarffassum Amaliae Grunow
  • Sarffassum amigdalifolium Bory de Saint-Vincent
  • Sargassum Ammophilum Yoshida i T.Konno
  • Sargassum Angii L.M.Laio
  • Sargassum Angustifolioides Tseng & Lu
  • Sarffassum angustifolium C.agardh
  • Sargassum aquifolium (Turner) C.agardh
  • Sargassum araii Yoshida
  • Sarffassum uzbrojone J.agardh
  • Sarffassum arnaudiana Góra
  • Sarffassum asperifolium Hering & G.Marten’s Ex J.Agardh
  • Sargassum Assimile Harvey
  • Sarffassum Autumnale Yoshida
  • Badanie Sargassum (Mertens) c.agardh
  • Sargassum Balingasayense Tron
  • Sargassum banyuejiaoense C.K.stseng & Lu
  • Sargassum Bataanense G.C.Trono
  • Sargassum Beihaiense C.K.stseng & B.LU
  • Sargassum Belangeri Bory de Saint-Vincent
  • Sargassum Bermudense Grunow
  • SARGASSUM BICORNE J.agardh
  • Sargassum biserrulioides C.K.stseng & Lu Baroen
  • Sargassum Boaleale Yoshida i Horiguchi
  • Sargassum boryanum A.richard
  • Sargassum botruosum Góra
  • Sargassum botuliforme Kraft
  • Sarffassum boveanum J.agardh
  • Sargassum Brachycarpum J.agardh
  • Sargassum Brachyphyllum Zanardini
  • Sargassum Brandegeei Setchell i n.l.gardner
  • Sargassum bulbiferum Yoshida
  • Sargassum buxifolium (Chauvin) M.J.Wynne
  • Sarffassum califomicum (Grunow) Setchell
  • Sargassum calophyllum Notariusz
  • Sargassum Capillare Kützing
  • Sargassum capilliforme Tseng & Lu
  • Sargassum Head Tseng & Lu
  • Sargassum carmafilum J.agardh
  • Sarffassum cavernulosum Kraft
  • Sargassum Cervicorne Greville
  • Sargassum Chamissonis Kützing
  • Sarffassum otoczony J.agardh
  • Sarffassum Gray J.agardh
  • Sargassum cinotum J.agardh
  • Sargassum claviferum J.agardh
  • Sargassum clonocarpum Grunow
  • Sargassum schludny Greville Ex J.agardh
  • Sarffassum zdezorientowany C.agardh
  • Sargassum congkinhii Pham-hoang ho
  • Sargassum Corderoi R.B. Modelo Jr, I.umezaki i L.M.Liao
  • Sarffassum Korean J.agardh
  • Sarffassum cornigerum Bez
  • Sarffassum cornutifrictionum H.D.nguyen i Q.N.Huynh
  • Sarffassum Costatum Tseng & Lu
  • Sargassum Cotoense Nguyen Huu Dai
  • Sargassum crispifolium Yamada
  • Sargassum cuneifolium J.agardh
  • Sargassum currimaoense G.C.Trono
  • Sarffassum cylindrocarpum Setchell i Gardner
  • Sargassum cylindrocystum Naprawiono i zanotowane
  • Sargassum cymosum C.agardh
  • Sargassum cystocarpum C.agardh
  • Sargassum cystophyllum Góra
  • Sargassum dasyphyllum
  • Sargassum Dazhouense Tseng & Lu
  • Sargassum decaisnei J.agardh
  • Sargassum denicystum Tseng & Lu
  • Sargassum densifolium Zanardini
  • Sarffassum z denticarpum T.ajisaka
  • Sargassum dentifolium (Turner) C.agardh
  • Sargassum Desfontainesii (Turner) C.agardh
  • Sargassum desvauxii (Mertens) c.agardh
  • Sarffassum distichum Bez
  • Dywizja Sarffassum Greville
  • Sargassum Diversifolium (Turner) C.agardh
  • Sargassum Dotyi Tron
  • Sargassum dumosum Greville
  • Sarffassum Ecoadoreanum W.R.Taylor
  • Sargassum elegans Suhr
  • Sargassum usunięto (Bez weryfikacji)
  • Sarffassum emarginatum C.K.stseng & Lu
  • Sargassum enifolium (C.agardh) j.gardh
  • Sarffassum erinaceum Greville ex Kuntze
  • Sargassum Erosum J.agardh
  • Sarffassum erumping Tseng & Lu
  • Sarffassum esperi C.agardh
  • Sargassum euryphyllum (Grunow) Tseng & Lu Baôn (bez Pégniation)
  • Sargassum Expanse Rycerz
  • Sarffassum zwodnicze Bez
  • Sargassum feldmannii Pham-hoang ho
  • SARGASSUM FERGUSONII Grunow
  • Sargassum filifolium (C.agardh) C.agardh
  • Sargassum filiforme Góra
  • Sargassum filipendula C.agardh
  • Sargassum fissifolium (Mertens) c.agardh
  • Sargassum Flavicans (Mertens) c.agardh
  • Sargassum flavifolium Kützing
  • Sarffassum pływa (Børgesen) Børgesen
  • Sarffassum kruchy J.agardh
  • Sargassum fresenianum J.agardh
  • Sargassum frutescens Tseng & Lu
  • Krzew Sarffassum Tseng & Lu
  • Sargassum Fujianense C.K.stseng & B.LU
  • Sargassum Fuliginosoides Tseng & Lu
  • Sargassum Fuliginosum Kützing
  • Sargassum fulvellum (Turner) C.agardh
  • Sarffassum Forks Kützing
  • Sargassum fuscifolium Tseng & Lu
  • Sargassum fusiforme (Harvey) Setchell
  • Sargassum galapagense Grunow
  • Sargassum Gemmiphorum Tseng & Lu
  • Sargassum giganteifolium Yamada
  • Sarffassum giganteum O.Camacho i G.Diaz-Pulido
  • Sarffassum Glandulifolium
  • Sarffassum glaueescens J.agardh
  • Sarffassum globulariifolium J.agardh
  • Sargassum godeffroyi Grunow
  • SARGASSUM GRACILE J.agardh
  • Sargassum gacillimum Reinbold
  • Sargassum graminifolium C.agardh
  • Sargassum granuliferum C.agardh
  • Sargassum Grevillei J.agardh
  • Sargassum guangdongii Tseng & Lu
  • Sargassum Hainanense Tseng & Lu
  • Sargassum hemiphylloides Kützing
  • Sargassum hemiphyllum (Turner) C.agardh
  • Sargassum henslowianum C.agardh
  • Sargassum zielnik Kützing
  • Sargassum Herklotsii Setchell
  • Sargassum herporhizum Setchell i n.l.gardner
  • Sargassum Hildebrandtii Grunow
  • Sarffassum hombronianum Góra
  • Sargassum Hornery (Turner) C.agardh
  • Sargassum Hornschuchii C.agardh
  • Sarffassum horridulum Grunow
  • Sarffassum Horrid Setchell i n.l.gardner
  • Sargassum Howeanum A.H.S.Lucas
  • Sargassum howellii Setchell
  • Sargassum Huangluice C.K.stseng & Lu
  • Sargassum Hystrix J.agardh
  • Sargassum ilicifolioides Tseng & Lu
  • Sargassum ilicifolium (Turner) C.agardh
  • Sargassum incanum Grunow
  • Sargassum insisifolium (Turner) C.agardh
  • Sarffassum Integrimum Tseng & Lu
  • Sargassum Integrifolioides Tseng & Lu
  • Sargassum Intermedium Tseng & Lu
  • Sarffassum insuncratum Notariusz
  • Sargassum Johnsonii V.J.Capman
  • Sargassum Johnstonii Setchell i n.l.gardner
  • Sargassum Kashiwajimanum Pójście
  • Sargassum kasyotense Yamada
  • Sargassum Kuetzingii Setchell
  • Sargassum Kushimotense Pójście
  • Sarffassum lacerifolium (Turner) C.agardh
  • Sarffassum gładkie J.agardh
  • Sarffassum lanccolatum J.agardh
  • Sargassum Lapazeanum Setchell i n.l.gardner
  • Sargassum latifolium (Turner) C.agardh
  • Sargassum laxifolium Tseng & Lu
  • Sargassum Leizhouense Tseng & Lu
  • Sarffassum Lark (Linnaeus) C.agardh
  • Sargassum leptopodum J.agardh
  • Sargassum leptopodum Bez
  • Sargassum liebmannii J.agardh
  • Sarffassum ligulatum C.agardh
  • SARGASSUM LineArearyfolium (Turner) C.agardh
  • Sargassum longicarpum Tseng & Lu
  • Sarffassum longicaulis Tseng & Lu
  • Sargassum longifrumtum C.K.stseng & B.LU
  • Sargassum Longivesiculosum Tseng & Lu
  • Sargassum lophocarpum J.agardh
  • Sargassum MacDougalii E.Y.DAWSON
  • Sargassum makrocarpum C.agardh
  • Sarffassum Macrophyllum Zanardini
  • Sargassum Magarevense (Bez weryfikacji)
  • Sargassum Marcacci Grunow
  • Margines Sargassum (C.agardh) j.gardh
  • Sargassum Mathiesonii Kliny
  • Sarffassum Maximilianii (Schrad.) Martens (bez weryfikacji)
  • Sargassum McClurei Setchell
  • Sargassum megalocystum Tseng & Lu
  • Sargassum Micracanthum (Kützing) Finans
  • Sarffassum Microceratium (Mertens ex Turner) C.agardh
  • Sargassum microcystum J.agardh
  • Sargassum Microphyllum C.agardh
  • Minimum Sargassum Tseng & Lu
  • Sargassum Miyabei Pójście
  • Sargassum Moelleri Reinbold
  • Sargassum muticum (Yendo) Fensholt
  • Sargassum Namoense Nguyen Huu Dai
  • Sargassum Nanshaense C.K.stseng & Lu
  • Sargassum Naozhounse C.K.stseng & Lu
  • Pływak Sarffassum (Linnaeus) Gaillon ( gatunek typu )
  • Sarffassum zaniedbał Naprawiono i zanotowane
  • Sarffassum neurofonum J.agardh
  • Sarffassum Nigrescens Zanardini
  • Sargassum nigrifolioides C.K.stseng & Lu
  • Sargassum nigrifolium Pójście
  • Sarffassum Nipponicum Pójście
  • Sargassum notarisii Zanardini
  • Sarffassum New-Holland P.C.Silva
  • Sarffassum New-Zealandiae (Bez weryfikacji)
  • Sargassum nozhouense Tseng & Lu
  • Sargassum obovatum Harvey
  • Sarffassum obtusifolium J.agardh
  • Sargassum ohnoi G.C.Trono
  • Sarffassum Okamurae Yoshida i T.Konno
  • Sargassum oligocohystum Góra
  • Sarffassum orotavicum T.Díaz-Villa, J.afonso-Carillo i M.Sansón
  • Sargassum pachycarpum J.agardh
  • Sarffassum spokojny Bory de Saint-Vincent
  • Sargassum blady (Turner) C.agardh
  • Sargassum Palmeri Grunow
  • Sarffassum paniculata J.agardh
  • Sarffassum Paradox (R.Brown ex Turner) Gaillon
  • Sargassum parvifolioides Tseng & Lu
  • Sargassum parvifolium (Turner) C.agardh
  • Sargassum parvivesiculosum C.K.stseng & Lu
  • Sarffassum Little Tseng & Lu
  • Patent Sarffassum C.agardh
  • Sarffassum Peach Kützing
  • Sargassum pfeifferae Grunow
  • Sargassum phamhoangii Nguyen Huu Dai
  • Sarffassum Philippinense Grunow
  • Sargassum phyllocystum C.K.stseng & Lu
  • Sargassum picconii Grunow
  • Sarffassum piluliferum (Turner) C.agardh
  • Sarffassum pinnatifidum Harvey
  • Sarffassum pinnatiphyllum Kraft
  • Sargassum Plagiophylloides (Bez weryfikacji)
  • Sarffassum Plagiophyllum C.agardh
  • Sargassum platycarpum Góra
  • Sargassum Podacanthoides Kraft
  • Sargassum Podacanthum Bez
  • Sargassum Polyacanthum J.agardh
  • Sargassum Polyceratium Góra
  • Sargassum Polycystum C.agardh
  • Sarffassum Polyphyllum J.agardh
  • Sargassum Polyporum Góra
  • Sarffassum Portierianum Zanardini
  • Sarffassum prymitywne Tseng & Lu
  • Sarffassum Prismatic V.D.Chauhan
  • Sargassum pseudocystocarpum Grunow
  • Sargassum pseudoluceolatum Tseng & Lu
  • Sargassum pterocystum Zanardini
  • Sargassum Pteropleuron Grunow
  • Sarffassum Stout Grunow
  • Sargassum pumilum Tseng & Lu
  • Sargassum Petty C.K.TSeng & Lu Baoren
  • Sargassum Petty W.R.Taylor
  • Sargassum piriforme C.agardh
  • Sargassum QingDaonse C.K.stseng & B.LU
  • Sargassum Qinzhouns C.K.stseng & B.LU
  • Sargassum Qionghaiense Tseng & Lu
  • Sargassum Quinhonense Nguyen Huu Dai
  • Sarffassum ramentaceum Zarmouth i Nizamuddin
  • Sargassum ramifolium Kützing
  • Sargassum Raoulii J.D. Hooker & Harvey
  • Sargassum Rhizophorum Tseng & Lu
  • Sargassum sztywno (Bez weryfikacji)
  • Sargassum ringgoldianum Harvey
  • Sargassum Robillardii (Grunow) Mattio, Zubia, Loveda, szydełko, Duong, Payri, Bhagooli i Bolton
  • Sarffassum solidny Rycerz
  • Sargassum dziób J.agardh
  • Sargassum Ryukyuense Shimabukuro i Yoshida
  • Sargassum Sagamianum Pójście
  • Sargassum salicifolioides Yamada
  • Sargassum salicifolium Naccari
  • Sargassum saltii (Turner) C.agardh
  • Sargassum Samarense G.C.C.Tronron, Jr.
  • Sargassum Sanyaense Tseng & Lu
  • Sargassum Saundersii Kraft
  • Sarffassum scabridum J.D. Hooker & Harvey
  • Sargassum Scherzerianum Grunow
  • Sargassum Schnetteri (Bula-Meyer) Camacho, Mattio i Diaz-Pulido
  • Sarffassum Grunow
  • Sargassum segii Yoshida
  • Sargassum serratifolium (C.agardh) C.agardh
  • Sargassum serratum Nguyen Huu Dai
  • Sargassum setifolium (Grunow) Setchell (bez weryfikacji)
  • Sargassum Shandongense C.K.stseng, Z.F.Zhang i B.LU
  • Sargassum Shangchuanii Tseng & Lu
  • Sawnamese Silgasion Tseng & Lu
  • Sargassum Siliquastrum (Mertens ex Turner) C.agardh
  • Sarffassum Siliquosum J.agardh
  • Sargassum Forest C.K.TSeng & Lu Baoren
  • Sargassum Silvai Tseng & Lu
  • Sargassum sinclairii J.D. Hooker & Harvey
  • Sargassum sinicola Setchell i n.l.gardner
  • Sargassum Sonorense E.Y.DAWSON
  • Sargassum spathulophyllum J.Tanaka, H. Murakami i S.Arai
  • Sargassum spinifex C.agardh
  • Sarffassum Spinuliger Bez
  • Sargassum squarrosum Greville
  • Sargassum Steinitzii Lipkin i P.C.Silva
  • Sargassum stenophyllum Martius
  • Sargassum subdroserifolium Tseng & Lu
  • Sarffassum subfalcatum Bez
  • Sargassum zastąpił (Forskål) c.agardh
  • Sarffassum Subspathulatum (Grunow) Grunow
  • Sarffassum Podtytuł C.K.stseng & Lu
  • Sargassum Sullivanii G.C.Trono
  • SARGASSUM SWARTZII C.agardh
  • SARGASSUM SYMPHYORHIZOIDEUM Tseng & Lu
  • Sarffassum taeniatum Kuntze (status niepewny)
  • Sarffassum Taiwanicum C.Keng i B.Llu
  • SARGASSUM CELEVIFOLIUM (Turner) C.agardh
  • SARGASSUM TEMPLETONII Setchell
  • Tender Sargassum J.agardh
  • Sargassum tenuifolioides Tseng & Lu
  • Sargassum tenuifolium Yamada
  • Sargassum cienki (Skończony i diesling) Grunow
  • Sargassum teretifolium J.agardh
  • Sargassum thivyae V. Krishnamuralty i R.ezhili
  • Sargassum thunbergii (Mertens ex Roth) Kuntze
  • Sargassum tilesii Grunow
  • Sargassum torvum J.agardh
  • Sargassum tosaense Pójście
  • Sargassum trichocarpum J.agardh
  • Sargassum trichophyllum (Kützing) Kuntze
  • Sargassum Tristichum Bez
  • Sargassum Turbinarioides Grunow
  • Sargassum Ulixei G.andrade-Sorcia i S.M.Boo
  • Sargassum umezakii G.C.Trono
  • Sarffassum vachellianum Greville
  • Sargassum vaysierianum Góra
  • Sarffassum velasquezii G.C.Trono
  • Sargassum verrucosum Zanardini
  • Odzież Sargassum (R.Brown ex Turner) C.agardh
  • Sargassum Wietnamense A.D. Zinova & Dinh (bez weryfikacji)
  • Sargassum vigorosum P.C.Silva
  • Sargassum virescens Naprawiono i zanotowane
  • Sarffassum virgatum C.agardh
  • Sarffassum vizcainense E.Y.DAWSON
  • Sargassum vulgare C.agardh
  • Sargassum Wakayamaense Yoshida
  • Sargassum Wangii C.K.TSeng & Lu Baoren
  • Sargassum Weizhouense C.K.Tseng & Lu Baoren (Sans Vérification)
  • Sargassum Weizhouense Tseng & Lu
  • Sargassum Weizhouns C.K.stseng & Lu
  • Sargassum Wenchangense Tseng & Lu
  • Sarffassum Wolfii S.A.EARLE
  • Sargassum Xishaense C.K.stseng & Lu
  • Sargassum Yamadae Yoshida i T.Konno
  • Sargassum Yamamotoi Yoshida
  • Sargassum Yendoi Okamura i Yamada
  • Sargassum Yezoense (Yamada) Yoshida i T.Konno
  • Sargassum Yinggehaiense Tseng & Lu
  • Sargassum yongxingense Tseng & Lu
  • Sargassum Yoshidae G.C.Trono
  • Sargassum Zacae Setchell
  • Sargassum Zhangii C.K.TSeng & Lu Baoren

Według TO JEST (27 lutego 2015 r.) [[[ 99 ] :

Według Światowy rejestr gatunków morskich (27 lutego 2015 r.) [[[ 100 ] :

  • podgatunek Sargassum (Arthrophycus)
  • podgatunek Sargassum (Bactrophycus)
  • podgatunek Sargassum (Phyllotricha)
  • podgatunek Sargassum (Sargassum)
  • Sarffassum Abbottiae G.C.C.Tron, Jr.,
  • Sargassum acinacifolium Setchell i N.L.Gardner, 1924
  • SARGASSUM ACINACIFOREE Mountain, 1850
  • Sargassum Acinaria C.agardh, 1821
  • Sargassum acinarium (Linnaeus) Setchell, 1933
  • Sargassum agardhianum Farlow, 1889
  • Sargassum agaviforme Tseng & Lu, 1994
  • Sargassum albemarlense W.R.Taylor, 1945
  • Sargassum albertisii Piccone, 1884
  • Sarffassum Alternate-Pinnate Yamada, 1942
  • Sargassum Amabile Yamada, 1942
  • Sarffassum Amaliae Grunow, 1874
  • Sargassum Ammophilum Yoshida i T.Konno, 1982
  • Sargassum Angii L.M.Laio, 1998
  • Sargassum Angustifolioides Tseng & Lu, 2004
  • Sarffassum angustifolium C.agardh, 1820
  • Sargassum aquifolium (Turner) C.agardh, 1820
  • Sargassum araii Yoshida, 1994
  • Sarffassum uzbrojone J.agardh, 1848
  • Sarffassum arnaudiana Mountain, 1850
  • Sarffassum asperifolium Hering & G.Marten’s Ex J.agardh, 1848
  • Sargassum Assimile Harvey, 1859
  • Sarffassum Autumnale Yoshida, 1983
  • Badanie Sargassum (Mertens) C.agardh, 1824
  • Sargassum Balingasayense Trone, 1994
  • Sargassum banyuejiaoense C.K.stseng & Lu, 1996
  • Sargassum Bataanense G.C.Trono, 1994
  • Sargassum Beihaiense C.K.stseng i B.Lu, 1999
  • Sargassum Belangeri Bory de Saint-Vincent, 1834
  • Sargassum Bermudense Grunow, 1916
  • SARGASSUM BICORNE J.agardh, 1848
  • Sargassum biserrulioides C.K.stseng & Lu Baroen, 2002
  • Sargassum Boaleale Yoshida i Horiguchi, 2000
  • Sargassum botruosum Mountain, 1850
  • Sargassum botuliforme Kraft, 2009
  • Sarffassum boveanum J.agardh, 1848
  • Sargassum Brachycarpum J.agardh, 1889
  • Sargassum Brachyphyllum Zanardini,
  • Sargassum Brandegeei Setchell i N.L.Gardner, 1924
  • Sargassum bulbiferum Yoshida, 1994
  • Sargassum buxifolium (Chauvin) M.J.Wynne, 2011
  • Sargassum calophyllum Notariusz, 1858
  • Sargassum Capillare Kützing, 1843
  • Sargassum capilliforme Tseng & Lu, 1994
  • Sargassum Head Tseng & Lu, 2002
  • Sargassum carmafilum J.agardh, 1848
  • Sarffassum cavernulosum Kraft, 2009
  • Sargassum Cervicorne Greville, 1849
  • Sargassum Chamissonis Kützing
  • Sarffassum otoczony J.agardh, 1848
  • Sarffassum Gray J.agardh, 1848
  • Sargassum cinotum J.agardh
  • Sargassum claviferum J.agardh, 1889
  • Sargassum clonocarpum Grunow, 1889
  • Sargassum schludny Greville Ex J.agardh, 1848
  • Sarffassum zdezorientowany C.agardh, 1824
  • Sargassum congkinhii Pham-Hoang Ho, 1967
  • Sargassum Corderoi R.B. Modelo Jr, I.umazaki i L.M.Liao,
  • Sarffassum Korean J.agardh, 1889
  • Sarffassum cornigerum Bez, 1915
  • Sarffassum cornutifrictionum H.D.nguyen i Q.N.Huynh, 1999
  • Sarffassum Costatum Tseng & Lu, 1996
  • Sargassum Cotoense Nguyen, 2002
  • Sargassum crispifolium Yamada, 1931
  • Sargassum cuneifolium J.agardh, 1837
  • Sargassum currimaoense G.C.Trono, 1994
  • Sarffassum cylindrocarpum Setchell & Gardner, 1924
  • Sargassum cylindrocystum Naprawiono i Notaris, 1853
  • Sargassum cymosum C.agardh, 1820
  • Sargassum cystocarpum C.agardh, 1820
  • Sargassum cystophyllum Mountain, 1842
  • Sargassum dasyphyllum
  • Sargassum Dazhouense Tseng & Lu, 1997
  • Sargassum decaisnei J.agardh, 1848
  • Sarffassum oszukuje (R.Brown ex Turner) J.agardh, 1873
  • Sargassum denicystum Tseng & Lu, 1996
  • Sargassum densifolium Zanardini,
  • Sarffassum z denticarpum T.Ajisaka, 1994
  • Sargassum dentifolium (Turner) C.agardh, 1820
  • Sargassum Desfontainesii (Turner) C.agardh, 1820
  • Sargassum desvauxii (Mertens) C.agardh, 1820
  • Sarffassum distichum Bez, 1845
  • Dywizja Sarffassum Greville, 1849
  • Sargassum Diversifolium (Turner) C.agardh, 1824
  • Sargassum Dotyi Trone, 1994
  • Sargassum dumosum Greville, 1848
  • Sarffassum Ecoadoreanum W.R.Taylor, 1945
  • Sargassum elegans Suhr, 1840
  • Sargassum usunięto
  • Sarffassum emarginatum C.K.stseng & Lu, 1978
  • Sargassum enifolium (C.agardh) J.Gardh, 1873
  • Sarffassum erinaceum Greville ex Kuntze, 1880
  • Sargassum Erosum J.agardh, 1889
  • Sarffassum erumping Tseng & Lu, 1996
  • Sarffassum esperi C.agardh, 1820
  • Sargassum euryphyllum (Grunow) Tseng & Lu, 2002
  • Sargassum Expanse Kuntze, 1880
  • Sarffassum zwodnicze Bez, 1845
  • Sargassum feldmannii Pham-Hoang Ho, 1967
  • SARGASSUM FERGUSONII Grunow, 1915
  • Sargassum filifolium (C.agardh) C.agardh, 1824
  • Sargassum filiforme Mountain, 1844
  • Sargassum filipendula C.agardh, 1824
  • Sargassum fissifolium (Mertens) C.agardh, 1823
  • Sargassum Flavicans (Mertens) C.agardh, 1820
  • Sargassum flavifolium Kützing, 1849
  • Sarffassum pływa (Børgesen) Børgesen, 1914
  • Sarffassum kruchy J.agardh, 1889
  • Sargassum fresenianum J.agardh, 1837
  • Sargassum frutescens Tseng & Lu, 1994
  • Krzew Sarffassum Tseng & Lu, 1994
  • Sargassum Fujianense C.K.stseng i B.LU, 2002
  • Sargassum Fuliginosoides Tseng & Lu, 2000
  • Sargassum fulvellum (Turner) C.agardh, 1820
  • Sarffassum Forks Kützing, 1843
  • Sargassum fuscifolium Tseng & Lu, 2002
  • Sargassum fusiforme (Harvey) Setchell, 1931
  • Sargassum galapagense Grunow, 1886
  • Sargassum gaudichaudii Mountain, 1842
  • Sargassum Gemmiphorum Tseng & Lu, 2000
  • Sargassum giganteifolium Yamada, 1925
  • Sarffassum Glandulifolium Grunow, 1900
  • Sarffassum glaueescens J.agardh, 1848
  • Sarffassum globulariifolium J.agardh, 1889
  • Sargassum godeffroyi Grunow, 1874
  • SARGASSUM GRACILE J.agardh, 1848
  • Sargassum gacillimum Reinbold, 1913
  • Sargassum graminifolium C.agardh, 1820
  • Sargassum granuliferum C.agardh, 1820
  • Sargassum Grevillei J.agardh, 1848
  • Sargassum guangdongii Tseng & Lu, 1994
  • Sargassum Hainanense Tseng i Lu, 1995
  • Sargassum hemiphylloides Kützing, 1847
  • Sargassum hemiphyllum (Turner) C.agardh, 1820
  • Sargassum henslowianum C.agardh, 1848
  • Sargassum zielnik Kützing, 1849
  • Sargassum Herklotsii Setchell, 1933
  • Sargassum herporhizum Setchell i N.L.Gardner, 1924
  • Sargassum heteromorphum J.agardh, 1873
  • Sargassum Hildebrandtii Grunow, 1889
  • Sarffassum hombronianum Mountain, 1845
  • Sargassum Hornery (Turner) C.agardh, 1820
  • Sargassum Hornschuchii C.agardh, 1820
  • Sarffassum horridulum Grunow, 1874
  • Sarffassum Horrid Setchell i N.L.Gardner, 1924
  • Sargassum howellii Setchell, 1937
  • Sargassum Huangluice C.K.stseng & Lu, 1996
  • Sargassum Hystrix J.agardh, 1847
  • Sargassum ilicifolioides Tseng & Lu, 2002
  • Sargassum ilicifolium (Turner) C.agardh, 1820
  • Sargassum incanum Grunow, 1915
  • Sargassum insisifolium (Turner) C.agardh, 1820
  • Sarffassum Integrimum Tseng & Lu, 2002
  • Sargassum Integrifolioides Tseng & Lu, 2000
  • Sargassum Intermedium Tseng & Lu, 1996
  • Sarffassum insuncratum Notariusz, 1842
  • Sargassum Johnsonii V.J.Capman, 1961
  • Sargassum Johnstonii Setchell i N.L.Gardner, 1924
  • Sargassum Kashiwajimanum Yeando, 1907
  • Sargassum kasyotense Yamada, 1944
  • Sargassum Kendrickii N.A.Goldberg i Huisman, 2004
  • Sargassum Kuetzingii Setchell, 1931
  • Sargassum Kushimotense Yeando, 1907
  • Sarffassum lacerifolium (Turner) C.agardh, 1820
  • Sarffassum gładkie J.agardh, 1889
  • Sarffassum lanccolatum J.agardh, 1848
  • Sargassum Lapazeanum Setchell i N.L.Gardner, 1924
  • Sargassum latifolium (Turner) C.agardh, 1820
  • Sargassum laxifolium Tseng & Lu, 1987
  • Sargassum Leizhouense Tseng & Lu, 1994
  • Sarffassum Lark (Linnaeus) C.agardh, 1820
  • Sargassum leptopodum J.agardh, 1889
  • Sargassum leptopodum Bez, 1871
  • Sargassum liebmannii J.agardh, 1847
  • Sarffassum ligulatum C.agardh, 1824
  • SARGASSUM LineArearyfolium (Turner) C.agardh, 1820
  • Sargassum longicarpum Tseng & Lu, 2004
  • Sarffassum longicaulis Tseng & Lu, 1994
  • Sargassum Longifolius
  • Sargassum longifrumtum C.K.stseng i B.LU, 1987
  • Sargassum Longivesiculosum Tseng i Lu, 1998
  • Sargassum lophocarpum J.agardh, 1889
  • Sargassum MacDougalii E.Y. Dawson, 1944
  • Sargassum makrocarpum C.agardh, 1820
  • Sarffassum Macrophyllum Zanardini,
  • Sargassum Magarevense
  • Sargassum Marcacci Grunow, 1884
  • Margines Sargassum (C.agardh) J.Gardh, 1848
  • Sargassum Mathiesonii Winges, 1992
  • Sarffassum Maximilian (Schrad.) Martens
  • Sargassum McClurei Setchell, 1933
  • Sargassum megalocystum Tseng & Lu, 1997
  • Sargassum Micracantha
  • Sargassum Micracanthum (Kützing) skończony, 1843
  • Sarffassum Microceratium (Mertens ex Turner) C.agardh, 1820
  • Sargassum microcystum J.agardh, 1848
  • Sargassum Microphyllum C.agardh, 1820
  • Minimum Sargassum Tseng & Lu, 2004
  • Sargassum Miyabei Yeando, 1907
  • Sargassum muticum (Yeando) Fensholt, 1955
  • Sargassum Namoense Nguyen Huu Dai, 2004
  • Sargassum Nanshaense C.K.stseng & Lu, 1996
  • Sargassum Naozhounse C.K.stseng & Lu, 1987
  • Pływak Sarffassum (Linnaeus) Gaillon, 1828
  • Sarffassum zaniedbał Naprawiono i Notaris, 1853
  • Sarffassum neurofonum J.agardh, 1889
  • Sarffassum Nigrescens Zanardini,
  • Sargassum nigrifolioides C.K.stseng & Lu, 1985
  • Sargassum nigrifolium Yeando, 1907
  • Sarffassum Nipponicum Yeando, 1907
  • Sargassum notarisii Zanardini,
  • Sarffassum New-Holland P.C.Silva, 1996
  • Sargassum nozhouense Tseng & Lu, 1987
  • Sargassum obovatum Harvey, 1834
  • Sarffassum obtusifolium J.agardh, 1848
  • Sargassum ohnoi G.C.Trono, 1994
  • Sarffassum Okamurae Yoshida i T.Konno, 1983
  • Sargassum oligocohystum Mountain, 1845
  • Sarffassum orotavicum T.Díaz-Villa, J.afonso-Carillo i M.Sansón, 2004
  • Sargassum pachycarpum J.agardh, 1889
  • Sarffassum spokojny Bory de Saint-Vincent, 1828
  • Sargassum blady (Turner) C.agardh, 1820
  • Sargassum Palmeri Grunow, 1915
  • Sarffassum paniculata J.agardh, 1848
  • Sarffassum Paradox (R.Brown ex Turner) Gaillon, 1828
  • Sargassum parvifolioides Tseng & Lu, 2002
  • Sargassum parvifolium (Turner) C.agardh, 1820
  • Sargassum parvivesiculosum C.K.stseng & Lu, 1979
  • Sarffassum Little Tseng & Lu, 2004
  • Patent Sarffassum C.agardh, 1820
  • Sargassum peronii C.agardh, 1820
  • Sarffassum Peach Kützing, 1849
  • Sargassum phamhoangii Nguyen, 2002
  • Sarffassum Philippinense Grunow, 1916
  • Sargassum phyllocystum C.K.stseng & Lu, 1979
  • Sargassum picconii Grunow, 1889
  • Sarffassum piluliferum (Turner) C.agardh, 1820
  • Sarffassum pinnatifidum Harvey, 1860
  • Sarffassum pinnatiphyllum Kraft, 2009
  • Sargassum Plagiophylloides
  • Sarffassum Plagiophyllum C.agardh, 1824
  • Sargassum platycarpum Mountain, 1842
  • Sargassum Podacanthoides Kraft, 2009
  • Sargassum Podacanthum Bez, 1845
  • Sargassum Polyacanthum J.agardh, 1889
  • Sargassum Polyceratium Mountain, 1837
  • Sargassum Polycystum C.agardh, 1824
  • Sarffassum Polyphyllum J.agardh, 1848
  • Sargassum Polyporum Mountain, 1842
  • Sarffassum Porterianum
  • Sarffassum Portieranum
  • Sarffassum Portierianum Zanardini,
  • Sarffassum prymitywne Tseng i Lu, 1995
  • Sarffassum Prismatic V.D.Chauhan, 1965
  • Sargassum pseudocystocarpum Grunow, 1886
  • Sargassum pseudoluceolatum Tseng & Lu, 2002
  • Sargassum pterocystum Zanardini,
  • Sargassum Pteropleuron Grunow, 1868
  • Sarffassum Stout Grunow, 1888
  • Sargassum pumilum Tseng & Lu, 2000
  • Sargassum Petty W.R.Taylor, 1975
  • Sargassum piriforme C.agardh, 1824
  • Sargassum QingDaonse Tseng & Lu, 2000
  • Sargassum Qinzhouns Tseng & Lu, 1994
  • Sargassum Qionghaiense Tseng & Lu, 1996
  • Sargassum Quinhonense Nguyen, 2002
  • Sarffassum ramentaceum Zarmouth i Nizamuddin, 1991
  • Sargassum ramifolium Kützing, 1861
  • Sargassum Raoulii J.D. Hooker & Harvey, 1845
  • Sargassum Rhizophorum Tseng & Lu, 2002
  • Sargassum ringoldianum Harvey, 1860
  • Sarffassum solidny Kuntze, 1880
  • Sargassum dziób J.agardh, 1896
  • Sargassum Sagamianum Yeando, 1907
  • Sargassum salicifolioides Yamada, 1942
  • Sargassum salicifolium (J.agardh) J.agardh, 1889
  • Sargassum salicifolium Naccari, 1828
  • Sargassum saltii (Turner) C.agardh, 1824
  • Sargassum Samarense G.C.C.Tron, Jr.
  • Sargassum Sanyaense Tseng & Lu, 1997
  • Sargassum Saundersii Kraft, 2009
  • Sarffassum scabridum J.D. Hooker & Harvey, 1845
  • Sargassum Scherzerianum Grunow, 1868
  • Sarffassum Grunow, 1916
  • Sargassum segii Yoshida, 1976
  • Sargassum serratifolium (C.agardh) C.agardh, 1820
  • Sargassum serratum Nguyen Huu Dai, 2004
  • Sargassum setifolium (Grunow) Setchell, 1937
  • Sargassum Shandongense Tseng, Zhang i Lu, 2000
  • Sargassum Shangchuanii Tseng & Lu, 1994
  • Sawnamese Silgasion Tseng & Lu, 2002
  • Sargassum Siliquastrum (Turner) C.agardh, 1820
  • Sarffassum Siliquosum J.agardh, 1848
  • Sargassum Forest C.K.TSeng & Lu Baoren, 1999
  • Sargassum Silvai Tseng & Lu, 1999
  • Sargassum sinclairii J.D. Hooker & Harvey, 1845
  • Sargassum sinicola Setchell i N.L.Gardner, 1924
  • Sargassum sonderi (J.agardh) J.agardh, 1873
  • Sargassum Sonorense E.Y. Dawson, 1960
  • Sargassum spathulophyllum J.Tanaka, H. Murakami i S.arai, 1999
  • Sargassum spinifex C.agardh, 1820
  • Sarffassum Spinuliger Bez, 1845
  • Sargassum squarrosum Greville, 1849
  • Sargassum Steinitzii Lipkin i P.C.Silva, 2002
  • Sargassum stenophyllum Martius, 1828
  • Sargassum subdroserifolium Tseng & Lu, 2002
  • Sarffassum subfalcatum Bez, 1854
  • Sargassum zastąpił (Forskål) C.agardh, 1820
  • Sarffassum Subspathulatum (Grunow) Grunow, 1916
  • Sarffassum Podtytuł C.K.stseng & Lu, 1978
  • Sargassum Sullivanii G.C.Trono, 1994
  • SARGASSUM SWARTZII C.agardh, 1820
  • SARGASSUM SYMPHYORHIZOIDEUM Tseng & Lu, 2002
  • Sarffassum Taiwanicum Tseng & Lu, 1999
  • SARGASSUM CELEVIFOLIUM (Turner) C.agardh, 1820
  • SARGASSUM TEMPLETONII Setchell, 1937
  • Tender Sargassum J.agardh, 1848
  • Sargassum tenuifolioides Tseng & Lu, 2002
  • Sargassum tenuifolium Yamada, 1942
  • Sargassum cienki (Skończone i diesling) Grunow, 1915
  • Sargassum teretifolium J.agardh, 1848
  • Sargassum thivyae V. Krishnamural i R.ezhili, 2000
  • Sargassum thunbergii (Mertens ex Roth) Kuntze, 1898
  • Sargassum tilesii Grunow, 1916
  • Sargassum torvum J.agardh, 1889
  • Sargassum tosaense Yeando, 1907
  • Sargassum trichocarpum J.agardh, 1889
  • Sargassum trichophyllum (Kützing) Kuntze, 1880
  • Sargassum Tristichum Bez, 1845
  • Sargassum Turbinarioides Grunow, 1915
  • Sargassum umezakii G.C.Trono, 1994
  • Sarffassum vachellianum Greville, 1848
  • Sargassum Varians Bez, 1845
  • Sargassum vaysierianum Mountain, 1850
  • Sarffassum velasquezii G.C.Trono, 1992
  • Sargassum verrucosum Zanardini,
  • Sarffassum verruculosum C.agardh, 1820
  • Odzież Sargassum (R.Brown ex Turner) C.agardh, 1820
  • Sargassum vigorosum P.C.Silva, 1996
  • Sargassum virescens Naprawiono i Notaris, 1853
  • Sarffassum virgatum C.agardh, 1820
  • Sarffassum vizcainense E.Y. Dawson, 1954
  • Sargassum vulgare C.agardh, 1820
  • Sargassum Wakayamaense Yoshida, 1994
  • Sargassum Wangii C.K.TSeng & Lu Baoren, 1998
  • Sargassum Weizhouense C.K.TSeng & Lu Baoren
  • Sargassum Weizhouns C.K.stseng & Lu, 2002
  • Sargassum Wenchangense Tseng i Lu, 1995
  • Sargassum Wsizhouense Tseng & Lu, 2002
  • Sargassum Xishaense C.K.stseng & Lu, 1979
  • Sargassum Yamadae Yoshida i T.Konno, 1983
  • Sargassum Yamamotoi Yoshida, 1983
  • Sargassum Jemenense
  • Sargassum Yendoi Okamura i Yamada, 1938
  • Sargassum Yezoense (Yamada) Yoshida i T.Konno, 1983
  • Sargassum Yinggehaiense Tseng & Lu, 2002
  • Sargassum yongxingense Tseng & Lu, 1997
  • Sargassum Yoshidae G.C.Trono, 1994
  • Sargassum Zacae Setchell, 1937
  • Sargassum Zhangii C.K.TSeng & Lu Baoren, 1999

Ławki dwóch holopélagicznych sargasów tworzą siedlisko derywujące dla innych gatunków.

  1. Ogólna historia Voyages, Pierre de Hondt, tom 10, 1753, strona 139: Czytaj online
  2. Cnrtl Czytaj online
  3. WordReference.com .
  4. Abbott, I.A. i Hollenberg, G.J. 1976. Morskie glony Kalifornii. Uniwersytet Stanford
  5. (W) Laffoley, D. D’A., Roe, H. S. J., Angel, M. V, Ardon, J., Bates, N. R., Boyd, I. L.,… Vats, V. (2011). « Ochrona i zarządzanie Morzem Sargasso: Złoty pływający las deszczowy Oceanu Atlantyckiego. Podsumowanie sprawy naukowe i potwierdzające dowody ».
  6. (W) SARGASSUM: Co, gdzie i dlaczego z tego wodorostów | Sklep nurkowy Akumal » , NA www.akumaldiveshop.com (skonsultuję się z ) .
  7. . Fucales , Oprócz kilku lokalnych gatunków inwazyjnych, są w rzeczywistości w trakcie regresji, udokumentowane przez kilka dekad, w szczególności przez IFremera we Francji)
  8. Rathier Isabelle (1985) Akwakultura i wędkarstwo Lambi (Strombus gigas) w Martyce; Biotechnologie pregross i powiększenia, 1. elementy do badania populacji Lambris i wykorzystanie zapasów | Archimer – Ifremer | Teza doktorska Stażka Oceanography Bio1ogy na stacji ifremer · du Robert, „Molluscs” Laboratory. Pod odpowiedzialnością Christiana Saint-Felix Listopad
  9. Winge O (1923) Morze Sargasso, jego granice i roślinność, raport na temat duńskich wypraw oceanograficznych 1908-10 do Morza Śródziemnego i sąsiedniego , Tom III, Różne papierowe papiery 2, 34pp, Kopenhaga
  10. Parr A.E (1939) Obserwacje ilościowe dotyczące roślinności sargassum pelagicznej zachodniego północnego Atlantyku ; Biuletyn z kolekcji oceanograficznej Bingham, Peabody Museum of Natural History, Yale University, 6 (7), 94pp.
  11. Butler, J.N., B.F. Morris, J. Cadw Allader i A.W. Stoner, 1983, Studies of Sargassum i Sargassum Community, Bermuda Biological Station, specjalna publikacja nr 22.
  12. Kruemmel O (1891) North-Atlantic Sargasose Lake, Petermann’s Geographic Montain, 37, 129-141.
  13. Dooley J.K (1972) Ryby związane z kompleksem Pelagic Sargassum, z dyskusją na temat społeczności Sargassum, wkład w naukę morską, 16, 1-32.
  14. Stoner A.W (1983) Pelagiczny Sargassum: Dowody na poważny spadek biomasy, Deep Sea Research, 30, 469-474
  15. Butler J.N i Stoner A.W (1984) Pelagiczny Sargassum: Czy jego biomasa zmieniła się w ciągu ostatnich 50 lat? Głębokie badania 31, 1259-1264
  16. Gower J&L. (2006), Satelity kolorów oceanicznych pokazują obszerne linie pływającego Sargassum w Zatoce Meksykańskiej |. Transakcje IEEE dotyczące geologii i teledetekcji, 44, 3619-3625
  17. A B C D i E Katie Langin (2018) Tajemnicze masy wodorostów napaść na karaibskie wyspy |. ; Wiadomości naukowe | 11 czerwca 2018
  18. Brigitte Gavio , Natali Rincon-Díaz Et Adriana Santos-Martínez « Ogromne ilości pelagicznego Sargassum na brzegach wyspy San Andres na południowo -zachodniej Karaiby », Kolumbijska akt biologiczny W tom. 20, N O 1, W P. 239–241 (Doi 10.15446/ABC.V20N1.46109 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  19. (W) Johnson, Inwazja Sargassum na Wschodni Karaiby i dynamika równikowego północnego Atlantyku. » W Postępowanie 65. Zatoki i Karaibów Instytutu Rybołówstwa W W P. 102–103
  20. (W) Francks, Bezprecedensowy napływ sargassum pelagicznego wzdłuż wybrzeży wyspy Karaibów latem 2011 roku » W Postępowanie 64. Zatoki Perskiej i Karaibów W
  21. (W) Smetacek, Zielone i złote wodorosty rosną » W Natura W tom. 504, N O 7478, W P. 84–88 (Doi 10.1038/nature12860 W Czytaj online )
  22. Pod wodorostami plaża » , NA lesechos.fr W (skonsultuję się z )
  23. Piriou Jean-Yves (1993) Zielona przypływ w Martynice | Ifremer, Francja | Umowa: N ° 92-43 z 13.02.92 Martinique Regional Council, nr 15-92 z 15.02.92 Rady Generalnej Martyki. ( wznawiać ) PDF, 42 p
  24. A et b Rathier I (1987) Stan postępu badań nad hodowlą (w parku, klatkach (prawdopodobnie w połączeniu z rybami) lub w zielniku) Lambi (Strombus gigas) w Martyce .
  25. Barile P.J, Stoner A.W i Young C.M (1994) Fototaksja i pionowa migracja koncha królowej (Strombus gigas Linne) larwy Vegiger . Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 183 (2), 147-162 | wznawiać
  26. (Stoner, 1989; Stoner A True, 1992; Theile, 2001; Frenkiel i Aldana Aranda, 2007)
  27. Brownell W.N (1977) Reprodukcja, kultura laboratoryjna i wzrost Strombus gigas, S. costatus i S. Pugilus w Los Roques, Wenezuela . Biuletyn nauk morskich, 27 (4), 668-680 | wznawiać .
  28. (Stoner, 1989; Stoner i Lally, 1994; Stoner i in., 1996 (1 i 2); Theile, 2001; Stoner, 2003)
  29. Randall J.E (1965) Efekt wypasu na trawie morskie przez roślinożerne ryby rafowe w Indiach Zachodnich . Ekologia, 46 (3), 255-260
  30. A B i C Jim Gower , Erika Młody i Stephanie Król « Obrazy satelitarne sugerują nowy region źródłowy Sargassum w 2011 roku », Listy zdalne W tom. 4, N O 8, W P. 764–773 (ISSN 2150-704X , Doi 10.1080/2150704x.2013.796433 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  31. A et b J. F. R. Gower i jego. Król « Dystrybucja pływającego Sargassum w Zatoce Meksykańskiej i Oceanie Atlantyckiego zmapowane za pomocą Merisa », International Journal of Remote Sensing W tom. 32, N O 7, W P. 1917–1929 (ISSN 0143-1161 , Doi 10.1080/01431161003639660 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  32. Gower, J., Hu, C., Borstad, G., i King, S. (2006). Satelity kolorów oceanicznych wykazują obszerne linie pływającego Sargassum w Zatoce Meksykańskiej. Transakcje IEEE dotyczące geologii i teledetekcji, 44 (12), 3619-3625.
  33. Sargassus: troska amerykańskich badaczy » , NA Web.archive.org W (skonsultuję się z )
  34. (W) Paweł Jaskółka oknówka , Dopóki Teles da Silva , Mauritius Duarte dos Santos i Karolina Dutra W Systemy zarządzania i metagovernance dla Amazon W tom. trzydziesty pierwszy, (ISSN 2050-0386 , Doi 10.1111/Reel.12425 W Czytaj online ) W P. 126–139
  35. Nerr dla Północny region recyrkulacji równikowej
  36. Oceanograf z University of the South Florida w Sankt Petersburg i główny autor badania danych satelitarnych w 2016 r.
  37. Wystawa na emanacje osieroconych sargassum glonów: Anses powtarza i uzupełnia swoje zalecenia | ANSES – krajowa agencja żywności, środowiska i żywności, » , NA www.anses.fr (skonsultuję się z )
  38. Gower, J., i King, S. (2008). Obrazy satelitarne pokazują ruch pływającego Sargassum w Zatoce Meksykańskiej i Oceanie Atlantyckim ; Fisheries and Ocean Canada, Institute of Ocean Sciences | Nature poprzednie: HDL: 10101/npre.2008.1894.1.
  39. Rada, S.A.F.M. (2002). Plan zarządzania rybołówstwem dla siedlisk sargassum pelagicznego regionu Południowego Atlantyku , 4699 (listopad), 1–153.
  40. Sargasses: Discord wokół Sargator » , NA Guadelupa 1 W (skonsultuję się z )
  41. (En-ue) Badanie Sargassum trwające w stanach CARICOM » , NA St. Lucia Times News W (skonsultuję się z )
  42. Guadelupa będzie gospodarzem międzynarodowego szczytu Sargasses » , NA www.20minutes.fr (skonsultuję się z )
  43. Moads, P.S.S. 1995. T. On Adventive Seaweed Sargassum Muticum (Yendo) Fensholt w Strangford Lough, Irlandia Północna . Ir.Nat. J. 25:111 – 113
  44. Dadness, D.M. 1999. Sargassum Muticum w Strangford Lough, 1995 – 1998; Przegląd wprowadzenia i kolonizacji Strangford Lough MNR i CSAC przez inwazyjne brązowe algi sargassum muticum. Środowisko i dziedzictwo
  45. A B i C Langin K (2019) To jest duża na świecie plamka wodorostów. I rośnie w nieznanym miejscu (jest to największa fabuła glonów na świecie. I rośnie w nieoczekiwanym miejscu) , Science News | 04 Juillet 2019 | Oceanografia | doi: 10.1126/science.aay6179
  46. Christina Kelly , Lorraine Szary , Rachel J. Shucksmith ET Jacqueline F. Tweddle « Badanie opcji, w jaki sposób rozwiązać skumulowany wpływ na planowanie przestrzenne morskie », Zarządzanie oceanicznie i przybrzeżne W tom. 102, W P. 139–148 (ISSN 0964-5691 , Doi 10.1016/j.cecoaman. 2014.09.019 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  47. A. Aui , I. Wang i Marcus Mba-Wright « Ocena ekonomicznej wykonalności etanolu celulozowego: metaanaliza badań analizy techno-ekonomicznej », Rewidowane i zrównoważone recenzje energii W tom. 145, W P. 111098 (ISSN 1364-0321 , Doi 10.1016/j.rser.2021.111098 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  48. Albertus J. Smit « Zastosowania lecznicze i farmaceutyczne produktów naturalnych z wodorostów: przegląd », Journal of Applied Phycology W tom. 16, N O 4, W P. 245–262 (ISSN 0921-8971 , Doi 10.1023/b: Japh.0000047783.36600.ef W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  49. Hui-yin Yeong , Siew Me Phang , C. R. K. Reddy Et NOZULAANI Khalid « Produkcja klonalnych materiałów do sadzenia z Gracilaria Changii i Kappaphycus alvarezii poprzez kulturę tkankową i kulturę eksplantatów G. Changai w fotobioreaktorach powietrznych », Journal of Applied Phycology W tom. 26, N O 2, W P. 729–746 (ISSN 0921-8971 I 1573-5176 , Doi 10.1007 / S10811-013-0122-4 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  50. Gian Powell B. Marquez , Wilfred John E. Santiañez , Gavino C. Tron i Marco Nemesio E. Montaño « Biomasa z wodorostów Filipin: Sustainable Feedstock do produkcji biogazu », Rewidowane i zrównoważone recenzje energii W tom. 38, W P. 1056–1068 (ISSN 1364-0321 , Doi 10.1016/j.rser.2014.07.056 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  51. A et b (W) Sarah Redmond Jang K. Igła W Kultura Sargassum w Korei: techniki i potencjał kultury w USA » W Publikacje dotacji morskiej Maine W (skonsultuję się z )
  52. a b c d e f i g (W) John J. Milledge , Birthe V. Nielsen , Polecenia. Sadek i Patricia J. Harvey W Wpływ wstępnej obróbki prania słodkowodnego na muticum Sargassum jako surowiec do produkcji biogazu » W Energie W tom. 11, N O 7, W P. 1771 (ISSN 1996-1073 , Doi 10.3390 / EN11071771 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  53. Hinds, C., Oxenford, H., Cumberbatch, J., Doyle, E., Cashman, A., i Campus, C. H. (2016). Sargassum Management Brief, 1–17.
  54. (W) John J. Milledge i Patricia J. Harvey W Złote przypływ: problem czy złota okazja? Walenność Sargassum z zalania plażowego » W Journal of Marine Science and Engineering W tom. 4, N O 3, W P. 60 (Doi 10 3390/JMSE4030060 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  55. (W) „Polisacharydy glonów i ich właściwości biologiczne”, w ostatnich postępach w przetwarzaniu mikro i makroalgalnym: perspektywy żywności i zdrowia , Wiley, (ISBN 978-1-119-54265-0 , Doi 10 1002/9781119542650 W Czytaj online )
  56. (W) Li-xin Zheng , Xian-Qiang Chen i Kit-Leong Cheong W Obecne trendy w polisacharydach alg morskich: przewód pokarmowy, katabolizm drobnoustrojowy i potencjał prebiotyczny » W International Journal of Biological Macromolecules W tom. 151, W P. 344–354 (Doi 10.1016/j.ijbiomac.2020.02.168 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  57. A et b Yende, S.R.; Harle, ONZ; Chaugule, B.B. Potencjał terapeutyczny i korzyści zdrowotne gatunków Sargassum. Pharmacogog. Rev. 2014, 8, 1–7
  58. (W) O. O. Istota i A. Egunyomi W Identyfikacja i badania chemiczne mas pelagicznych Sargassum natans (Linnaeus) Gaillon i S. fluitans (Borgessen) Borgesen (Brown Algae), znalezione w stanie Ondo w stanie Nigeria, Nigeria » W African Journal of Biotechnology W tom. 13, N O 10, (ISSN 1684-5315 , Doi 10.4314/AJB.V13I10 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  59. (W) Jan Milledge i Patricia Harvey W Złote przypływ: problem czy złota okazja? Walenność Sargassum z zalania plażowego » W Journal of Marine Science and Engineering W tom. 4, N O 3, W P. 60 (ISSN 2077-1312 , Doi 10 3390/JMSE4030060 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  60. Martinez Nadal, N.G. (1961) Antybiotyki właściwości Sargassum Natans z Puerto Rico. J. Pharm. Sci., 50, 356.
  61. (W) P. Barka , M. Carpa , Ning-yang To i Chao Liu W Makroalgi jako biofaktoria nanocząstek metali; Biosynteza i zastosowania żywnościowe » W Postęp w nauce koloidów i interfejsów W tom. 311, W P. 102829 (Doi 10.1016 / j.cis.2022.022829 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  62. John J. Milledge i Patricia J. Harvey « Trawienie beztlenowe i zgazowanie wodorostów », Wielkie wyzwania w biotechnologii morskiej , Springer International Publishing, W P. 237–258 (ISBN 978-3-319-69074-2 , Doi 10 1007/978-3-319-69075-9_7 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  63. (W) John J. Milledge , Birthe V. Nielsen , Supattra Manoreina i Patricia J. Harvey W Krótki przegląd trawienia beztlenowego glonów dla bioenergii » W Energie W tom. dwunasty, N O 6, W P. 1166 (ISSN 1996-1073 , Doi 10.3390/EN12061166 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  64. (W) Supattra Manoreina , John J. Milledge , Birthe V. Nielsen i Patricia J. Harvey W Przegląd metod wstępnego traktowania wodorostów w celu zwiększenia produkcji biopaliw przez trawienie lub fermentację beztlenowe » W Fermentacja W tom. 4, N O 4, W P. 100 (ISSN 2311-5637 , Doi 10.3390/fermentacja4040100 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  65. Gaétan LeBrun W Sargasses, rozwiązania przeciwko tym glonom, które atakują Antyli? » , NA Geo.fr W (skonsultuję się z )
  66. (W) Yesssica Rivera-Hernández , Guadalupe Hernández-Eugenio , Nagamani Balagurusamy Et Teodoro Kolczasty solar W Sargassum-Pig Obraz Współczesność: alternatywa dla produkcji bioenergii i obróbki zanieczyszczających odpadów przybrzeżnych » W Energia odnawialna W tom. 199, W P. 1336–1344 (ISSN 0960-1481 , Doi 10.1016/j.nene.2022.09.068 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  67. (W) Sundaram THERIGAIVE , Sundaram Vickram , Nibedita Dey et Govindarajan Świeciło W Polecenie paliw opartych na biomasie glonów do zrównoważonego rozwoju środowiska w stosunku do stałej fali biopaliwowej analizy konfliktów: Czy biorefineria alg trzeciej generacji jest dobrodziejstwem? » W Paliwo , Springer International Publishing, tom. 317, W P. 123494 (ISBN 978-3-030-91954-2 , Doi 10.1016/j.fuel.2022.123494 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  68. (W) M. Dinesh Kumar , S. Kavitha , Vinay Kumar Tyagi i Marcus Rajkumar W Produkcja biohodkowska pochodzącego z makroalg: biorefineria i okrągła biogobonia » W Konwersja biomasy i biorefineria W tom. dwunasty, N O 3, W P. 769–791 (ISSN 2190-6815 I 2190-6823 , Doi 10.1007/S13399-020-01187-X W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  69. (W) Shabarish S. , Tamilarasan K. , Rajesh Banu J. et Godvin Sharmila W. W Produkcja biohydrogenu z makroalg przez sonic biosurfaktant dezintegrację: podejście energooszczędne » W Zasoby, środowisko i zrównoważony rozwój W tom. 11, W P. 100093 (Doi 10.1016/j.resenv.2022.100093 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  70. (W) Esther Candelaria Martinez-Molina , Yolanda Freile-Pelegrín , Sandy Luz Ovando-chacón Federico Antonio Gutiérrez-Miceli W Opracowanie i charakterystyka jadalnego filmu opartego na alginianach z Sargassum fluitans włączonych do nanocząstek srebra uzyskanych przez zieloną syntezę » W Journal of Food Pomiar i Charakterystyka W tom. 16, N O 1, W P. 126–136 (ISSN 2193-4134 , Doi 10 1007/S11694-021-01156-6 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  71. (W) Zrównoważone zasoby globalne wodorostów Tom 1: Bioresources, uprawa, handel i wielofunkcyjne zastosowania , Springer International Publishing, (ISBN 978-3-030-91954-2 , Doi 10 1007/978-3-030-91955-9, (603-626), (2022) W Czytaj online )
  72. (W) Srinivasan Pandi Prabha , Senthil Nagappan , Ravichandran Rathna i Ravichandran Viveka W «Blue Biotechnology: A Vision for Future Marine Biorefineries» , W Rafinacja pozostałości biomasy dla zrównoważonej energii i bioproduktów , Elsevier, coll. «Technologia, postęp, ocena cyklu życia i ekonomia», , 463–480 P. (ISBN 978-0-12-818996-2 , Doi 10.1016/B978-0-12-818996-200021-1 W Czytaj online )
  73. (W) L. H. Kostary , J.V. Inhibitor , E. H. Turystyka piesza Et O. M. S. Gerlach W Zielona synteza nanocząstek złota uzyskana z alg sargassum cymosum: optymalizacja, charakterystyka i stabilność » W Bionanoscience W tom. dziesięć, N O 4, W P. 1049–1062 (ISSN 2191-1630 I 2191-1649 , Doi 10.1007/S12668-020-00776-4 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  74. (W) Jessica M. M. Adams , Lesley B. Tokarz , Trisha A. Do góry i Marie E. Kirby W Ocena pirolizy cech pochodzących z kiszonki makroalgi morskiej jako zmiany gleby » W GCB Bioenergy W tom. dwunasty, N O 9, W P. 706–727 (ISSN 1757-1693 I 1757-1707 , Doi 10.1111/gcbb.12722 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  75. Jak docenić wodorosty Sargassum? – Wiadomości/wiadomości » , NA Agri-city.info (skonsultuję się z )
  76. Jodany Fortuné i al. (2018) Inwazja na glony na plażach Haiti: Plaga czy okazja? ; Artykuł opublikowany na 2016-02-17 | Le Nouvelist
  77. (W) Janice I. McCauley , Pożyczyć Labeieuw , Ana c. Jaramillo-Madrid Et Luong n. Nguyen W Zarządzanie metanogenezą jelit w przeżuwaczy przez dodatki paszowe pochodzące z glonów » W Obecne raporty o zanieczyszczeniach W tom. 6, N O 3, W P. 188–205 (ISSN 2198-6592 , Doi 10.1007/S40726-020-00151-7 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  78. (W) John J. Milledge Suppattra Manoreina W Rozdział 6 – Przechowywanie wodorostów do produkcji biopaliw: Endilage » W Postępy w zielonej i zrównoważonej chemii (CC-BYS-SA4.0) , Elsevier, W P. 155–167 (ISBN 978-0-12-817943-7 , Doi 10.1016/B978-0-12-817943-7.00005-6 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  79. Patrz „Tabela 1” Chapitre 2. «Skład Sargassum i potencjalne zastosowania związków» W (W) Jan Milledge i Patricia Harvey W Złote przypływ: problem czy złota okazja? Walenność Sargassum z zalania plażowego (CC-BY-SA4.0) » W Journal of Marine Science and Engineering W tom. 4, N O 3, W P. 60 (ISSN 2077-1312 , Doi 10 3390/JMSE4030060 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  80. Zmienione zawiadomienie i raport Ansesa dotyczące wystaw z gazem Gaseous EmanaTations of Sargassusa rozkładające się » [PDF] , NA Anses.fr W W P. 14
  81. (W) John James Milledge , Supattra Manoreina , Elena Arribas López i Debbie Bartlett W Zaczyniania Sargassum w Turks i Caicos: potencjał metanu i analizy Analizy ostateczne, lipidowe, aminokwasowe, metalu i metaloidów » W Energie W tom. 13, N O 6, W P. 1523 (ISSN 1996-1073 , Doi 10.3390/EN13061523 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  82. Merlin Alvarado-Morales , Alessio Boldrin , ssani. Karakashev ET Susan L. Trzymany « Ocena cyklu życia produkcji biopaliw z brązowych wodorostów w nordyckich warunkach », Technologia Biozasobów W tom. 129, W P. 92–99 (ISSN 0960-8524 , Doi 10.1016/j.biortech.2012.11.029 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  83. a b c d e f i g (W) John J. Milledge i Patricia J. Harvey W Potencjalny proces „przeszkody” w użyciu makroalg jako surowca do produkcji biopaliw na Wyspach Brytyjskich » W Journal of Chemical Technology & Biotechnology W tom. 91, N O 8, W P. 2221–2234 (ISSN 0268-2575 I 1097-4660 , PMID 27635107 , PMCID PMC4999046 , Doi 10.1002/JCTB.5003 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  84. Prognozowanie Sargassum na Gwadelupe i wyspach północnych – Météo -France » , NA Web.archive.org W (skonsultuję się z )
  85. A B i C Christiane Herrmann , Jamie Fitzgerald , Richard O’Shea i ao Xia « Zakazanie wodorostów na przemysł biopaliw wodorczych », Technologia Biozasobów W tom. 196, W P. 301–313 (ISSN 0960-8524 , Doi 10.1016/j.biortech.2015.07.098 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  86. Maff (1999) Wpływ na środowisko kiszonki belowanej. WA 0111; Raport cytowany przez xxxxxxx
  87. A et b John J. Milledge i Patricia J. Harvey W Zatrudnione i trawienie beztlenowe Sargassum Muticum W tom. 28, (ISSN 0921-8971 , Doi 10.1007 / S10811-016-0804-9 W Czytaj online ) W P. 3021–3030
  88. (W) Michael H. Gerard W Mikrobiologia trawienia beztlenowych , John Wiley & Sons, Inc., (ISBN 0-471-20693-8 W Czytaj online )
  89. A et b Kathryn D. Wakeman , Leena Erving , Marja L. Riekkola-Vanhanen Et Jaakko A. Czysty « Kiszonka potwierdza zmniejszenie siarczanu w obróbce ścieków zawierających metale i siarczan », Badania wody W tom. 44, N O 17, W P. 4932–4939 (ISSN 0043-1354 , Doi 10.1016/j.watres.2010.07.025 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  90. E. I. Cypr « Grupy skończone przyznające się do 2-punktowego 2-automorfizmu », Uwagi matematyczne Akademii Nauk ZSRR W tom. 23, N O 5, W P. 359–362 (ISSN 0001-4346 I 1573-8876 , Doi 10.1007/BF01789001 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  91. Bakterie kwasu mlekowego , CRC Press, (ISBN 978-0-429-15145-3 W Czytaj online )
  92. (W) John J. Milledge Suppattra Manoreina W Rozdział 6 – Przechowywanie wodorostów do produkcji biopaliw: Endilage » W Postęp w zielonej i zrównoważonej chemii , Elsevier, W P. 155–167 (ISBN 978-0-12-817943-7 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  93. (W) Gagandeep Kaur , Szorstki Kumar Zapamiętać Singla W Różnorodne zastosowania płynów jonowych: kompleksowy przegląd » W Journal of Molecular Liquals W tom. 351, W P. 118556 (ISSN 0167-7322 , Doi 10.1016/j.molliq.2022.118556 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  94. (W) Barbara M. C. Mnóstwo , Daisy Martins , Leonardo M. De Souza Mesquita Et Márcia C. Śnieg W Stosowanie wodnych roztworów cieczy jonowych jako chlorofilu w procesach ekstrakcji w fazie stałej » W Chemical Engineering Journal W tom. 428, W P. 131073 (ISSN 1385-8947 , Doi 10.1016/j.cece.2021.131073 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  95. Colin McReynolds , Amandine Adrien , Natalia Castejon Et Susana C. M. Fernandes « Zielony w głębokim niebieskim: głębokie rozpuszczalniki eutektyczne jako wszechstronne systemy do przetwarzania biomasy morskiej », Zielone listy i recenzje chemii W tom. 15, N O 2, W P. 383–404 (ISSN 1751-8253 , Doi 10.1080/17518253.2022.2065890 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  96. (W) Stokrotka Martins Jesteś P.M. Ventura W Rozdział 12 – Pojawiające się techniki ekstrakcji wodorostów przy użyciu cieczy jonowych » W Postęp w zielonej i zrównoważonej chemii , Elsevier, W P. 287–311 (ISBN 978-0-12-817943-7 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  97. (W) I W. Snehya , M. A. Sundaramahalingam , J. Rajeshbanu i gramy Useashizm W Badania oceny wydajności wstępnej obróbki środków powierzchniowo czynnych ultradźwiękowych wstępnych obróbki Sargassum tennerimum (MARINE MACROALGAE) w celu osiągnięcia opłacalnej produkcji biohydrogenu » W International Journal of Wodogrogą Energia W tom. 47, N O 39, W P. 17184–17193 (ISSN 0360-3199 , Doi 10.1016/j.ijhyden.2022.03.216 W Czytaj online , skonsultuałem się z )
  98. Guiry, M.D. i Guiry, G.M. Algebaza . Światowa publikacja elektroniczna, National University of Ireland, Galway. https://www.algaebase.org, dostęp 27 lutego 2015 r.
  99. Zintegrowany system informacji taksonomicznej (ITIS), www.itis.gov, CC0 https://doi.org/10.5066/f7KH0KBK , dostęp 27 lutego 2015 r.
  100. Światowy rejestr gatunków morskich , dostęp 27 lutego 2015 r.

Powiązane artykuły [[[ modyfikator |. Modyfikator i kod ]

O innych projektach Wikimedia:

Linki zewnętrzne [[[ modyfikator |. Modyfikator i kod ]

after-content-x4