Chryseobacterium – Wikipedia wiki

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Genre de bactéries

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Chryseobacterium est un genre de bactéries à Gram négatif. Chryseobacterium Les espèces sont des bactéries chimiorganotrophiques de la forme de la tige. Chryseobacterium Formez des colonies de couleur jaune-orange typiques dues au pigment de type flexirubine. Le genre contient plus de 100 espèces décrites à partir d’habitats divers, notamment des sources d’eau douce, du sol, des poissons marins et des hôtes humains. [2]

Histoire [ modifier ]]

Le genre Chryseobacterium a été créé à l’origine en 1994 par Vandamme et al . [3] pour six taxons bactériens qui, à l’époque, ont été classés comme membres du genre Flavobacterium : F. Balustinum , F. Indologènes , F. Gleum , F. Meningosepticum , F. indoltheticum , et F. Scophthalmum . En 2005, un genre supplémentaire, Elizabethkingia , a été créé pour deux espèces dans le genre Chryseobacterium ; à savoir, C. méningosepticum et C. miricola. [4] En 2002 normes et directives pour la description de nouveaux taxons dans la famille de Flavobactéries ont été publiés par Bernardet et al. [5] En 2006, le genre Chryseobacterium s’était étendu à 10 espèces, en 2014 plus de 60 espèces [6] et actuellement plus de 100.

Écologie [ modifier ]]

Chryseobacterium spp. ont été récupérés dans les sols, les racines des plantes, les fleurs, le matériel végétal en décomposition et la sève d’érable. Certains associés Chryseobacterium Les souches sont capables d’inhiber les champignons pathogènes végétaux. Chryseobacterium spp. ont également été récupérés dans les ruisseaux d’eau douce, les lacs, leurs sédiments, les systèmes de refroidissement par eau, l’eau potable, les boissons à l’acide lactique, les plantes d’embouteillage de bière, les boues de bioréacteur, le sol pollué, les sédiments marins et le pergélisol. [6] Chryseobacterium spp. sont associés à une multitude d’animaux – ils ont été détectés dans l’intestin intermédiaire des moustiques, dans les arts des cafards, les excréments à mille-pattes et le pingouin guano, les homogénats intestinaux de copépodes d’eau douce, de plumes d’oiseaux, de lait de vache, de viande et de poulet bruts. Chryseobacterium spp. ont été récupérés du mucus de poissons apparemment sains, mais parfois ils sont considérés comme un organisme de détérioration. [6] Trois nouvelles espèces tolérantes à froid de Chryseobacterium , C. Oranimen C. haïfesense , et C. Bovis ont été détectés dans du lait cru en Israël. [7]

Pathogénèse [ modifier ]]

Le Flavobacterium le plus pathogène spp., Chryseobacterium méningosepticum , qui a provoqué de nombreuses infections, a été reclassé au genre Elizabethkingia. [4] Chryseobacterium indologènes Bien que de nature omniprésente, principalement trouvée dans le sol et l’eau, est un pathogène humain rare. Cependant, dans de rares cas, il peut provoquer de graves infections, en particulier parmi les immunodéprimés. [8] La plupart du temps, les infections sont acquises à l’hôpital, souvent associées à l’immunosuppression ou aux cathéters à demeure. Il a été signalé comme l’agent causal de la bactériémie, de la péritonite, de la pneumonie, de l’empyème, de la pyélonéphrite, de la cystite, de la méningite et des infections associées au cathéter veineuses centrales. Le nombre de C. indologenes Les infections augmentent. La majorité des infections signalées sont venues de Taïwan et seulement 10% environ sont en dehors de l’Asie. Quelques rapports sont venus d’Australie, d’Inde, d’Europe et des États-Unis. [8] C. indologenes est également pathogène pour la coche douce, tandis que d’autres Chryseobacterium spp. ont été retrouvés de tortues malades, de grenouilles et de poissons, en particulier C. Scophthalmum, C. Joostei, C. Pisciola, C. Chaponense, C. Viscerum et C. Oncorhynchi, C. Aahli, C. Man, C. SHIGENSE ainsi que C. indologenes qui est associé aux maladies humaines. [6]

Certain Chryseobacterium Les espèces ont été signalées comme ayant des propriétés de digestion matricielle inhabituelles, étant capables de dégrader les matrices collagènes les plus difficiles, telles que les plumes ou les exosquelettes. Ces propriétés sont probablement médiées par l’action de chitinases spécifiques et de métalloprotéases de type collagénase. Certaines des espèces, comme Chryseobacterium nématophage Il a été démontré qu’ils pouvaient infecter, tuer et finalement consommer tous les tissus nématodes, y compris l’exosquelette cuticulaire normalement très insoluble. [9] Les activités métalloprotéases de la chitinase, de la gélatinase et de la collagénase ont été liées à Chryseobacterium La motilité de glissement exercée par des systèmes de sécrétion de type IX. En effet, certaines de ces enzymes possèdent des signaux de sécrétion de type IX de type C-terminal. [dix] Chryseobacterium eux-mêmes n’ont ni des protéines ou des structures de collagène ni de chitine. Chryseobacterium les espèces appartiennent au Bactériodes Phylum, dont les membres sont de plus en plus décrits comme ayant un système de motilité et de sécrétion inhabituellement lié. [9] [dix]

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Des toxines de type neurotoxine botulique (semblables à un bont) ont été détectées dans le génome de Chryseobacterium piperi Str. CTM et ils présentent un groupe très divergent de toxines de type BoNT. L’un des prédits C. Piperi Les toxines de type BONT ont induit la mort des cellules nécrotiques dans les cellules rénales humaines, mais il ne s’est pas avéré cliver des substrats de caisse claire communs de Bonts. [11]

Résistance aux antibiotiques [ modifier ]]

Chryseobacterium spp. sont intrinsèquement résistants à un large spectre d’antibiotiques, notamment les tétracyclines, l’érythromycine, le linézolide, les polymyxines, les aminoglycosides, le chloramphénicol et de nombreuses bêta-lactames . [6]

Espèces [ modifier ]]

Les espèces comprennent: [d’abord]

Voir également [ modifier ]]

Les références [ modifier ]]

  1. ^ un b Euzéby JP, Parte AC. Chryseobacterium . Liste des noms procaryotes avec debout dans la nomenclature (LPSN) . Récupéré 29 juin, 2021 .
  2. ^ Matu A, Lum Nde A, Oosthizen L, Hitzeroth A, Badenhorst M, Duba L, Gidaga M, Kriek IM, Lekoma PJ, Nel L, Dos Ramos SM, Rossouw J, Selobe N, Serobe N, Serobe N, Serobe S, Tiyani T, Hugo CJ, Newman JD (janvier 2019). “Soules de type Chryseobacterium” . Annonces de ressources en microbiologie . 8 (1): E01518–18. deux: 10.1128 / MRA.01518-18 . PMC 6318376 . PMID 30637405 .
  3. ^ Vandamme P, Bernardet JF, Segers P, Kersters K, Holmes B (1994-10-01). “Notes: Nouvelles perspectives dans la classification des flavobactéries: Description de Chryseobacterium Gen. Nov., Bergeyella Gen. Nov., Et Emppedobacter nom. Rev” . Journal international de bactériologie systématique . 44 (4): 827–831. est ce que je: 10.1099 / 00207713-44-4-827 . ISSN 0020-7713 .
  4. ^ un b Kim KK, Kim MK, Lim JH, Park HY, Lee St (mai 2005). “Transfert de Chryseobacterium meningosepticum et de Chryseobacterium miricola à Elizabethkingia gén. Nov. As Elizabethkingia meningoseptica peigne. . Journal international de microbiologie systématique et évolutive . 55 (PT 3): 1287–93. deux: 10.1099 / ijs.0.63541-0 . PMID 15879269 .
  5. ^ Bernardet JF, Nakagawa Y, Holmes B, et al. (Sous-comité sur la taxonomie de Flavobacterium et des bactéries de type Cytophaga du Comité international de systématique des procaryotes) (mai 2002). “Des normes minimales proposées pour décrire les nouveaux taxons de la famille Flavobacteriaceae et une description modifiée de la famille” . Journal international de microbiologie systématique et évolutive . 52 (PT 3): 1049–70. deux: 10.1099 / 00207713-52-3-1049 . PMID 12054224 .
  6. ^ un b c d C’est Loch TP, Faisal M (mai 2015). “Infections flavobactériennes émergentes chez les poissons: une revue” . Journal of Advanced Research . 6 (3): 283–300. est ce que je: 10.1016 / j.jare.2014.10.009 . PMC 4522593 . PMID 26257926 .
  7. ^ Hantsis-Zacharov E, Shakéd T, Senderovich Y, Halpern M (novembre 2008). “Chryseobacterium oranimense sp. Nov., Une bactérie psychrotolérante, protéolytique et lipolytique isolée du lait de vache cru” . Journal international de microbiologie systématique et évolutive . 58 (PT 11): 2635–9. deux: 10.1099 / ijs.0.65819-0 . PMID 18984706 .
  8. ^ un b Mucerji R, Kakarala R, Smith SJ, King HG (avril 2016). “Chryseobacterium Indologènes: une infection émergente aux États-Unis” . Rapports de cas BMJ . 2016 : BCR2016214486. est ce que je: 10.1136 / BCR-2016-214486 . PMC 4840731 . PMID 27053540 .
  9. ^ un b
  10. ^ un b McBride MJ, Zhu Y (janvier 2013). “Les gènes de motilité de glissement et de sécrétion de ports sont répandus parmi les membres du phylum bacteroidetes” . Journal of Bactériologie . 195 (2): 270–8. est ce que je: 10.1128 / jb.01962-12 . PMC 3553832 . PMID 23123910 .
  11. ^ Mansfield MJ, Doxey AC (juin 2018). “Des informations génomiques sur l’évolution et l’écologie des neurotoxines botuliques” . Pathogènes et maladies . 76 (4). est ce que je: 10.1093 / FEMSPD / FTY040 . PMID 29684130 .

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