[{"@context":"http:\/\/schema.org\/","@type":"BlogPosting","@id":"https:\/\/wiki.edu.vn\/en2fr\/wiki28\/jingzhaotoxine-wikipedia\/#BlogPosting","mainEntityOfPage":"https:\/\/wiki.edu.vn\/en2fr\/wiki28\/jingzhaotoxine-wikipedia\/","headline":"Jingzhaotoxine -wikipedia wiki","name":"Jingzhaotoxine -wikipedia wiki","description":"before-content-x4 Prot\u00e9ine du venin de tarentule chinois after-content-x4 Jingzhaotoxine Les prot\u00e9ines font partie d’un venin s\u00e9cr\u00e9t\u00e9 par Chilobrachys jingzhao ,","datePublished":"2017-03-03","dateModified":"2017-03-03","author":{"@type":"Person","@id":"https:\/\/wiki.edu.vn\/en2fr\/wiki28\/author\/lordneo\/#Person","name":"lordneo","url":"https:\/\/wiki.edu.vn\/en2fr\/wiki28\/author\/lordneo\/","image":{"@type":"ImageObject","@id":"https:\/\/secure.gravatar.com\/avatar\/c9645c498c9701c88b89b8537773dd7c?s=96&d=mm&r=g","url":"https:\/\/secure.gravatar.com\/avatar\/c9645c498c9701c88b89b8537773dd7c?s=96&d=mm&r=g","height":96,"width":96}},"publisher":{"@type":"Organization","name":"Enzyklop\u00e4die","logo":{"@type":"ImageObject","@id":"https:\/\/wiki.edu.vn\/wiki4\/wp-content\/uploads\/2023\/08\/download.jpg","url":"https:\/\/wiki.edu.vn\/wiki4\/wp-content\/uploads\/2023\/08\/download.jpg","width":600,"height":60}},"image":{"@type":"ImageObject","@id":"https:\/\/wiki.edu.vn\/wiki4\/wp-content\/uploads\/2023\/08\/download.jpg","url":"https:\/\/wiki.edu.vn\/wiki4\/wp-content\/uploads\/2023\/08\/download.jpg","width":100,"height":100},"url":"https:\/\/wiki.edu.vn\/en2fr\/wiki28\/jingzhaotoxine-wikipedia\/","wordCount":3326,"articleBody":" (adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});before-content-x4Prot\u00e9ine du venin de tarentule chinois (adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});after-content-x4Jingzhaotoxine Les prot\u00e9ines font partie d’un venin s\u00e9cr\u00e9t\u00e9 par Chilobrachys jingzhao , la tarentule chinoise. et agir comme des neurotoxines. Il existe plusieurs sous-types de jingzhaotoxine, qui diff\u00e8rent en termes de s\u00e9lectivit\u00e9 des canaux et de caract\u00e9ristiques de modification. Toutes les sous-esp\u00e8ces agissent comme des modificateurs de d\u00e9clenchement des canaux sodiques et \/ ou, dans une moindre mesure, des canaux potassiques. Table of Contents (adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});after-content-x4Sources [ modifier ]] Chimie [ modifier ]] Mode d’action [ modifier ]] Jztx-i [ modifier ]] Jztx-2 [ modifier ]] JZTX-3 [ modifier ]] Jztx-iv [ modifier ]] Jztx-in [ modifier ]] Jztxx ix [ modifier ]] JZT XI [ modifier ]] JZTX-12 [ modifier ]] JZTX-34 [ modifier ]] Toxicit\u00e9 [ modifier ]] Voir \u00e9galement [ modifier ]] Les r\u00e9f\u00e9rences [ modifier ]] Sources [ modifier ]] Chilobrachys jingzhao , \u00e9galement connu sous le nom de tarentule de tigre de terre chinoise ou Chilobrachys guangxiensis , se trouve en Chine et en Asie. Cette grande tarentule appartient \u00e0 la famille des Theraphosidae. [d’abord] Chimie [ modifier ]] Les jingzhaotoxines rapport\u00e9es sur cette page sont des polypeptides de 29 \u00e0 36 r\u00e9sidus avec un nombre variable de ponts disulfure stabilisants. [2] [3] [4] [5] [6] [7] [8] [9] [dix] [11] [douzi\u00e8me] [13] [14] [15] Ttx-s que + canaux Jztx-i. JZTX-II, JZTX-IV, JZTX-V, JZTX-34, JZTX-IX TTX-R d\u00e9j\u00e0 + canaux JZTX-2, JZTX-III, JZTX-4, JZTX-5, JZTX-9, JZTX-11 Kv2.1 JZTX-I, JZTX-III, JZTX-IX, JZTX-XI KV4.1 JZTX-I, JZTX-XII Kv4.2 Jztx-in Les jingzhaotoxines peuvent cibler plusieurs canaux. Les valeurs IC50 suivantes ont \u00e9t\u00e9 d\u00e9termin\u00e9es: Jingzhaotoxine Canaliser IC50 Jztx-i KV2.1, KV4.1 [13] 8 \u03bcm Jztx-2 TTX-R VGSC [8] 260 nm JZTX-3 TTX-R NAV1.5 [6] 300 nm JZTX-3 Kv2.1 * Jztx-in TTX-R VGSC [15] 27,6 nm Jztx-in TTX-S VGSC [15] 30,2 nm Jztx-in Kv4.2 [15] 604 nm JZT XI VGSC ** JZT XI Kv2.1 *** JZTX-12 KV4.1 [14] 363 nm \u00ab*\u00bb Seule une constante de dissociation (KD) a \u00e9t\u00e9 mesur\u00e9e. KD; 0,43 \u03bcm [dix] [13] (adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});after-content-x4\u00ab**\u00bb seul un KD a \u00e9t\u00e9 mesur\u00e9. KD; 1,28 \u03bcm [5] \u00ab***\u00bb seul un KD a \u00e9t\u00e9 mesur\u00e9. KD; 0,74 \u03bcm [5] Mode d’action [ modifier ]] Jztx-i [ modifier ]] Effet sur les canaux sodiques d\u00e9tenus (VGSC) JZTX-I agit pr\u00e9f\u00e9rentiellement sur les canaux sodiques cardiaques, mais affecte \u00e9galement les canaux sodiques de tension sensible \u00e0 la tension sensible \u00e0 la tension (TTX-S) (VGSC) dans les neurones du ganglion racine dorsal (DRG). [11] [douzi\u00e8me] Il modifie le courant de sodium en inhibant l’inactivation du canal et en acc\u00e9l\u00e9rant la r\u00e9cup\u00e9ration apr\u00e8s inactivation. JZTX-I n’affecte pas le seuil d’activation des canaux sodiques. Effet sur les canaux potassiques JZTX-I a un effet modeste sur les courants de potassium en ralentissant le taux d’activation des canaux KV2.1 et KV4.1 et en augmentant la d\u00e9sactivation du courant de queue. [13] Jztx-2 [ modifier ]] Effet sur VGSC JZTX-II a une forte affinit\u00e9 avec le VGSC (TTX-R) r\u00e9sistant aux t\u00e9trodotoxines (TTX-R) dans les myocytes cardiaques o\u00f9 il ralentit consid\u00e9rablement une inactivation rapide. Bien que JZTX-II n’ait pas d’effet sur les canaux neuronaux TTX-R dans les neurones DRG, il affecte les courants de sodium TTX-S en ralentissant leur inactivation. [8] Effet sur les canaux potassiques \u00c0 ce stade, les effets de JZTX-II sur les canaux potassiques sont inconnus. JZTX-3 [ modifier ]] Effet sur VGSC JZTX-III a une forte affinit\u00e9 avec le canal sodium Gated TTX NAV1,5 TTX RAV1,5 qui est exprim\u00e9 dans les myocytes cardiaques mais pas dans les neurones. [dix] Il modifie le courant du canal sodium en d\u00e9pla\u00e7ant sa courbe d’activation vers une tension plus d\u00e9polaris\u00e9e sans affecter sa courbe d’inactivation. JZTX-II est amarr\u00e9 dans la liaison NAV1.5 DIIS3-4, qui est responsable de sa forte s\u00e9lectivit\u00e9. [7] Effet sur les canaux potassiques JZTX-III modifie le canal de potassium KV2.1 ferm\u00e9 en tension dans les myocytes cardiaques et peut se lier aux canaux ouverts et ferm\u00e9s. Il modifie le d\u00e9clenchement du canal KV2.1 en d\u00e9pla\u00e7ant la courbe d’activation vers une tension plus d\u00e9polaris\u00e9e et en acc\u00e9l\u00e9rant la d\u00e9sactivation. [dix] [13] Jztx-iv [ modifier ]] Effet sur VGSC JZTX-IV agit sur les canaux sodiques TTX-S dans les neurones DRG en r\u00e9duisant faiblement les amplitudes de pointe et en ralentissant \u00e9videmment la cin\u00e9tique d’inactivation. En revanche, JZTX-IV agit sur les canaux sodiques TTX-R sur les myocytes cardiaques en r\u00e9duisant \u00e9videmment son courant de pic et en ralentissant faiblement la cin\u00e9tique d’inactivation. De plus, JZTX-IV d\u00e9place la courbe d’inactivation \u00e0 l’\u00e9tat d’\u00e9quilibre sur les deux r\u00e9cepteurs.M\u00eame \u00e0 des concentrations \u00e9lev\u00e9es, JZTX-IV n’a aucun effet sur les canaux sodiques TTX-R sur les neurones DRG de rat ou sur les canaux sodiques TTX-S sur les neurones hippocampiques. [9] Effet sur les canaux potassiques \u00c0 ce stade, les effets du JZTX-IV sur les canaux potassiques sont largement inconnus. Jztx-in [ modifier ]] Effet sur VGSC JZTX-V a une forte affinit\u00e9 avec l’\u00e9tat ferm\u00e9 au repos de TTX-R (NAV1.8 NAV1.9) et TTX-S (NAV1.6, NAV1.7) VGSC dans les neurones DRG. Il modifie le courant du canal sodique en d\u00e9pla\u00e7ant sa courbe d’activation vers une tension plus d\u00e9polaris\u00e9e et sa courbe d’inactivation vers une tension plus hyperpolaris\u00e9e. [15] Cela signifie que le canal de sodium li\u00e9 \u00e0 la toxine s’ouvrira \u00e0 un potentiel membranaire plus positif et se ferme \u00e0 un potentiel membranaire plus n\u00e9gatif. Effet sur les canaux potassiques JZTX-V affecte principalement le courant du canal de potassium KV4.2 [15] En d\u00e9pla\u00e7ant sa courbe d’activation vers une direction plus d\u00e9polaris\u00e9e et, \u00e0 des concentrations \u00e9lev\u00e9es, en acc\u00e9l\u00e9rant la d\u00e9sactivation. [13] Jztxx ix [ modifier ]] Effet sur VGSC JZTX-IX agit sur les canaux TTX-R et TTX-S en d\u00e9pla\u00e7ant leur \u00e9tat d’activation vers une tension plus d\u00e9polaris\u00e9e. De plus, il capture les canaux sodiques \u00e0 un \u00e9tat ferm\u00e9 qui acc\u00e9l\u00e8re l’inactivation. [4] Effet sur les canaux potassiques JZTX-IX n’affecte que le canal KV2.1 en d\u00e9pla\u00e7ant sa courbe d’activation vers une tension plus d\u00e9polaris\u00e9e. [4] JZT XI [ modifier ]] Effet sur VGSC JZTX-XI r\u00e9duit l’amplitude maximale du courant de sodium des canaux sodiques exprim\u00e9s dans les myocytes cardiaques et ralentit l’inactivation du courant. JZTX-XI ne montre aucun effet sur les courants de sodium TTX-R et TTX-S dans les neurones ganglionnaires de la racine dorsale [5] Effet sur les canaux potassiques JZTX-XI d\u00e9place la courbe d’activation de KV2.1 \u00e0 une tension plus d\u00e9polaris\u00e9e et acc\u00e9l\u00e8re sa d\u00e9sactivation. [5] JZTX-12 [ modifier ]] Effet sur VGSC \u00c0 ce stade, les effets de JZTX-XII sur les canaux sodiques sont largement inconnus. Effet sur les canaux potassiques JZTX-XII agit sp\u00e9cifiquement sur les canaux de potassium KV4.1. Il module le courant de potassium en d\u00e9calant l’activation de KV4.1 \u00e0 des tensions plus d\u00e9polaris\u00e9es et en produisant un ralentissement d\u00e9pendant de la concentration de la cin\u00e9tique d’activation et d’inactivation. [14] JZTX-34 [ modifier ]] Effet sur VGSC Le JZTX-34 inhibe les courants de sodium TTX-S, mais n’a aucun effet sur les courants de sodium TTX-R. JZTX-34 n’affecte pas la cin\u00e9tique d’activation \/ d’inactivation et n’affecte pas non plus le taux de r\u00e9cup\u00e9ration de l’inactivation. [3] Effet sur les canaux potassiques \u00c0 ce stade, les effets du JZTX-34 sur les canaux potassiques sont largement inconnus. Toxicit\u00e9 [ modifier ]] Le venin brut de Chilobrachys Jingzhao est mortel aux souris avec un LD50 intrap\u00e9riton\u00e9al de 4,4 mg \/ kg. [dix] Les rares valeurs LD50 qui ont \u00e9t\u00e9 d\u00e9crites pour les toxines qui composent le venin varient; 0,23 mg \/ kg [4] (JZTX-IX) – 1,48 mg \/ kg [douzi\u00e8me] (JZTX-I). Voir \u00e9galement [ modifier ]] Les r\u00e9f\u00e9rences [ modifier ]] ^ Taxonomie Chilobrachys Jingzhao ^ Liao, Z., Cao, J., Li, S., Yan, X., Hu, W., He, Q., Chen, J., Tang, J., Xie, J., et Liang, S. (2007). Analyse prot\u00e9omique et peptidomique du venin de la tarentula chilobrachys jingzhao chinoise. Prot\u00e9omics, 7 , 1892-1907. ^ un b Chen, J., Zhang, Y., Rong, M., Zhao, L., Jiang, L., Zhang, D., Wang, M., Xiao, Y., et Liang, S. (2009). Expression et caract\u00e9risation de la jingzhaotoxine-34, une nouvelle neurotoxine du venin de la tarentula chilobrachys jingzhao. Peptides, 30 , 1042-1048. ^ un b c d Deng, m., Kuang, F., Sun, Z., Tao, H., Cai, T., Zhong, L IX, un nouveau modificateur de d\u00e9clenchement des canaux de sodium et de potassium de Tarantulalochys jingzhao chinois. Neuropharmacologie, 57 , 77-87. ^ un b c d C’est Liao, Z., Yuan, C., Deng, M., Li, J., Chen, J., Yang, Y., Hu, W., et Liang, S. (2006). Structure de la solution et caract\u00e9risation fonctionnelle de la jingzhaotoxine-xi: un nouveau modificateur de d\u00e9clenchement des canaux de potassium et de sodium. Biochimie, 45 , 15591-15600 ^ un b Liao, Z., Yuan, C., Peng, K., Xiao, Y., et Liang, S. (2007). Structure de la solution de la jingzhaotoxine-III, une toxine peptidique inhibant les canaux NAV1.5 et KV2.1. Toxic, 50 , 135-143. ^ un b Rong, M., Chen, J., Tao, H., Wu, Y., Jiang, P., Lu, M., Su, H., Chi, Y., Cai, T., Zhao, L., Zeng, X., Xiao, Y., et Liang, S. (2011). Base mol\u00e9culaire de la toxine toxine de la toxine jingzhaotoxine-III (TRTX-CJ1) interagissant avec les capteurs de tension dans le sous-type de canaux sodiques NAV1.5. The Faseb Journal, 25, 3177-3185. ^ un b c Wang, M., Liu, Q., Luo, H., Li, J., Tang, J., Xiao, Y., et Liang, S. (2008). Jingzhaotoxin-II, une nouvelle toxine de tarentule cible pr\u00e9f\u00e9rentiellement le canal de sodium cardiaque de rat. Pharmacologie biochimique, 76 , 1716-1727 ^ un b Wang, M., Diao, J., Li, J., Tang, J., Lin, Y., Hu, W., Zhang, Y., Xiao, Y., et Liang, S. (2008). JZTX-IV, une toxine unique de canaux de sodium acide isol\u00e9e de l’araign\u00e9e Chilobrachys jingzhao. Toxicon, 52 , 871-880. ^ un b c d C’est Xiao, Y., Tang, J., Yang, Y., Wang, M., Hu, W., Xie, J., Zeng, X., et Liang, S. (2004). Jingzhaotoxine-III, une nouvelle toxine d’araign\u00e9e inhibant l’activation du canal sodique de tension dans les myocytes cardiaques de rat. The Journal of Biological Chemistry, 279 , 26220-26226. ^ un b Xiao, Y., Tang, J., Hu, W., Xie, J., Maertens, C., Tygat, J., et Liang, S. (2005). La jingzhaotoxine-I, une nouvelle neurotoxine d’araign\u00e9e inhibant pr\u00e9f\u00e9rentiellement l’inactivation des canaux sodiques cardiaques. The Journal of Biological Chemistry, 280 , 12069-12076. ^ un b c Xiao, Y., Li, J., Deng, M., Dai, C., et Liang, S. (2007). Caract\u00e9risation du m\u00e9canisme excitatrice induit par la jingzhaotoxine-I inhibant l’inactivation des canaux sodiques. Toxic, 50 , 507-517. ^ un b c d C’est F Yuan, C., Yang, S., Liao, Z., et Liang, S. (2007). 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