Fabaceae – Wikipedia

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In diesem Artikel geht es um Fabaceae sl (oder Leguminosae), wie vom APG-System definiert. Für Fabaceae ss (oder Papilionaceae), wie von weniger modernen Systemen definiert, siehe Faboideae.

Familie von Hülsenfrüchten blühende Pflanzen

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Das Fabaceae [citation needed] oder Hülsenfrüchte,[6] allgemein bekannt als die Hülsenfrucht, Erbse, oder Bohnenfamilie, sind eine große und wirtschaftlich bedeutende Familie von Blütenpflanzen. Es umfasst Bäume, Sträucher und mehrjährige oder einjährige krautige Pflanzen, die leicht an ihren Früchten (Leguminosen) und ihrer Zusammensetzung, Blättern, zu erkennen sind. Viele Hülsenfrüchte haben charakteristische Blüten und Früchte. Die Familie ist weit verbreitet und ist mit etwa 765 Gattungen und fast 20.000 bekannten Arten nach den Orchidaceae und Asteraceae die drittgrößte Landpflanzenfamilie in Bezug auf die Artenzahl[7].[8][9][1]

Die fünf größten Gattungen der Familie sind Astragalus (über 3.000 Arten), Akazie (über 1.000 Arten), Indigofera (ca. 700 Arten), Krotalaria (rund 700 Arten) und Mimose (rund 400 Arten), die etwa ein Viertel aller Hülsenfruchtarten ausmachen. Die ca. 19.000 bekannte Leguminosenarten machen etwa 7% der Blütenpflanzenarten aus.[9][10] Fabaceae ist die am häufigsten vorkommende Familie in tropischen Regenwäldern und Trockenwäldern Amerikas und Afrikas.[11]

Neuere molekulare und morphologische Beweise unterstützen die Tatsache, dass die Fabaceae eine einzige monophyletische Familie sind.[12] Diese Schlussfolgerung wird nicht nur durch den Grad der Wechselbeziehung zwischen verschiedenen Gruppen innerhalb der Familie im Vergleich zu den Leguminosen und ihren engsten Verwandten gestützt, sondern auch durch alle neueren phylogenetischen Studien, die auf DNA-Sequenzen basieren.[13][14][15] Diese Studien bestätigen, dass es sich bei den Fabaceae um eine monophyletische Gruppe handelt, die eng mit den Familien Polygalaceae, Surianaceae und Quillajaceae verwandt ist und zur Ordnung der Fabales gehört.[16]

Neben Getreide, einigen Früchten und tropischen Wurzeln sind eine Reihe von Leguminosen seit Jahrtausenden ein Grundnahrungsmittel des Menschen und ihre Verwendung steht in engem Zusammenhang mit der menschlichen Evolution.[17]

Die Familie der Fabaceae umfasst eine Reihe wichtiger Nutz- und Nahrungspflanzen, darunter Glycin max (Sojabohne), Phaseolus (Bohnen), Pisum sativum (Erbse), Cicer arietinum (Kichererbsen), Medicago sativa (Alfalfa), Arachis hypogaea (Erdnuss), Ceratonia siliqua (Johannisbrot), und Glycyrrhiza glabra (Lakritze). Eine Reihe von Arten sind in verschiedenen Teilen der Welt auch Unkrautschädlinge, darunter: Cytisus scoparius (Besen), Robinia pseudoacacia (Robinie), Ulex europaeus (Stechginster), Pueraria montana (kudzu) und eine Reihe von Lupinus Spezies.

Etymologie[edit]

Der Name ‘Fabaceae’ stammt von der nicht mehr existierenden Gattung Faba, jetzt enthalten in Vicia. Der Begriff “Faba” kommt aus dem Lateinischen und scheint einfach “Bohne” zu bedeuten. Leguminosae ist ein älterer Name, der noch als gültig gilt,[6] und bezieht sich auf die Früchte dieser Pflanzen, die Hülsenfrüchte genannt werden.

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Beschreibung[edit]

Fabaceae reichen in der Gewohnheit von riesigen Bäumen (wie Koompassia excelsa) bis hin zu kleinen einjährigen Kräutern, wobei die Mehrheit krautige Stauden sind. Pflanzen haben unbestimmte Blütenstände, die manchmal auf eine einzige Blüte reduziert sind. Die Blüten haben ein kurzes Hypanthium und ein einzelnes Fruchtblatt mit einem kurzen Gynophor und produzieren nach der Befruchtung Früchte, die Hülsenfrüchte sind.

Wachstumsgewohnheit[edit]

Die Fabaceae haben eine Vielzahl von Wuchsformen, darunter Bäume, Sträucher, krautige Pflanzen und sogar Weinreben oder Lianen. Die krautigen Pflanzen können ein-, zwei- oder mehrjährig sein, ohne grundständige oder endständige Blattaggregate. Viele Hülsenfrüchte haben Ranken. Sie sind aufrechte Pflanzen, Epiphyten oder Reben. Letztere stützen sich durch Triebe, die sich um eine Stütze drehen, oder durch Blüten- oder Blattranken. Pflanzen können Heliophyten, Mesophyten oder Xerophyten sein.[3][9]

Blätter[edit]

Die Blätter sind normalerweise wechselständig und zusammengesetzt. Meistens sind sie gerade oder ungerade gefiedert (z Caragana und Robinie bzw.), oft dreiblättrig (zB Trifolium, Medicago) und selten handförmig zusammengesetzt (zB Lupinus), bei den Mimosoideae und den Caesalpinioideae häufig zweifach gefiedert (z Akazie, Mimose). Sie haben immer Nebenblätter, die blattartig sein können (z Pisum), dornenartig (zB Robinie) oder eher unauffällig sein. Blattränder sind ganzrandig oder gelegentlich gesägt. Sowohl die Blätter als auch die Blättchen haben oft faltige Pulvini, um böse Bewegungen zu ermöglichen. Bei einigen Arten haben sich Flugblätter zu Ranken entwickelt (z Vicia).[3][9][17]

Viele Arten haben Blätter mit Strukturen, die Ameisen anlocken, die die Pflanze vor pflanzenfressenden Insekten schützen (eine Form des Mutualismus). Extraflorale Nektarien sind bei den Mimosoideae und den Caesalpinioideae verbreitet und werden auch bei einigen Faboideae (z Vicia sativa). In einigen Akazie, die modifizierten hohlen Nebenblätter werden von Ameisen bewohnt und werden als Domatien bezeichnet.

Wurzeln[edit]

Viele Fabaceae beherbergen Bakterien in ihren Wurzeln in Strukturen, die als Wurzelknötchen bezeichnet werden. Diese Bakterien, bekannt als Rhizobien, haben die Fähigkeit, Stickstoffgas (N2) aus der Luft und wandeln ihn in eine Form von Stickstoff um, die für die Wirtspflanze verwertbar ist ( NO3− oder NH3 ). Dieser Vorgang wird als Stickstofffixierung bezeichnet. Die Hülsenfrucht als Wirt und Rhizobien als Lieferant von verwertbarem Nitrat gehen eine symbiotische Beziehung ein. Mitglieder der Gattung Phaseoleae Apios Knollen bilden, die essbar sein können.[18]

Blumen[edit]

“Erbsenblume” leitet hierher weiter. Für das aus Erbsen hergestellte Mehl siehe Erbsenmehl.

Eine Blume von Wisteria sinensis, Faboideae. Zwei Blütenblätter wurden entfernt, um Staubgefäße und Stempel zu zeigen

Die Blüten haben oft fünf im Allgemeinen verwachsene Kelchblätter und fünf freie Kronblätter. Sie sind im Allgemeinen zwittrig und haben ein kurzes, meist becherförmiges Hypanthium. Es gibt normalerweise zehn Staubblätter und einen verlängerten oberen Fruchtknoten mit gebogenem Griffel. Sie sind meist in unbestimmten Blütenständen angeordnet. Fabaceae sind typischerweise entomophile Pflanzen (dh sie werden von Insekten bestäubt), und die Blüten sind normalerweise auffällig, um Bestäuber anzuziehen.

Bei den Caesalpinioideae sind die Blüten oft zygomorph, wie in Cercis, oder fast symmetrisch mit fünf gleichen Blütenblättern, wie in Bauhinia. Das obere Blütenblatt ist im Gegensatz zu den Faboideae das innerste. Einige Arten, wie einige in der Gattung Senna, haben asymmetrische Blüten, wobei eines der unteren Blütenblätter größer als das gegenüberliegende ist und der Griff zur Seite gebogen ist. Der Kelch, die Krone oder die Staubblätter können in dieser Gruppe auffällig sein.

Bei den Mimosoideae sind die Blüten aktinomorph und in kugeligen Blütenständen angeordnet. Die Blütenblätter sind klein und die Staubblätter, die mehr als nur 10 sein können, haben lange, farbige Filamente, die den auffälligsten Teil der Blüte darstellen. Alle Blüten eines Blütenstandes öffnen sich gleichzeitig.

Bei den Faboideae sind die Blüten zygomorph und haben eine spezielle Struktur. Das obere Blütenblatt, das Banner oder Standard genannt wird, ist groß und umhüllt den Rest der Blütenblätter in der Knospe, wobei es sich oft zurückzieht, wenn die Blume blüht. Die beiden benachbarten Blütenblätter, die Flügel, umgeben die beiden unteren Blütenblätter. Die beiden unteren Blütenblätter sind an der Spitze miteinander verschmolzen (bleiben an der Basis frei) und bilden eine bootartige Struktur, die als Kiel bezeichnet wird. Die Staubblätter sind immer zehn an der Zahl, und ihre Filamente können in verschiedenen Konfigurationen verwachsen sein, oft in einer Gruppe von neun Staubblättern plus einem separaten Staubblatt. Verschiedene Gene in der CYCLOIDEA (CYC)/DICHOTOM (DICH) Familie werden im oberen (auch dorsalen oder adaxialen) Blütenblatt ausgedrückt; bei einigen Arten, wie z Cadia, werden diese Gene in der gesamten Blüte exprimiert, wodurch eine radialsymmetrische Blüte entsteht.[19]

Obst[edit]

Der Eierstock entwickelt sich am häufigsten zu einer Hülsenfrucht. Eine Hülsenfrucht ist eine einfache Trockenfrucht, die normalerweise auf zwei Seiten dehisiert (sich entlang einer Naht öffnet). Ein gebräuchlicher Name für diese Fruchtart ist eine “Schote”, obwohl dies auch auf einige andere Fruchtarten zutrifft. Einige Arten haben Samarae, Lomente, Follikel, indehiszente Hülsenfrüchte, Achänen, Steinfrüchte und Beeren aus der grundlegenden Hülsenfrucht entwickelt.

Physiologie und Biochemie[edit]

Die Fabaceae sind selten cyanogen. Wo sie sind, leiten sich die cyanogenen Verbindungen von Tyrosin, Phenylalanin oder Leucin ab. Sie enthalten häufig Alkaloide. Proanthocyanidine können entweder als Cyanidin oder Delphinidin oder beides gleichzeitig vorliegen. Flavonoide wie Kaempferol, Quercitin und Myricetin sind häufig vorhanden. Ellagsäure wurde in keiner der untersuchten Gattungen oder Arten gefunden. Zucker wird in Form von Saccharose innerhalb der Pflanzen transportiert. Die C3-Photosynthese wurde in einer Vielzahl von Gattungen gefunden.[3] Die Familie hat auch eine einzigartige Chemie entwickelt. Viele Hülsenfrüchte enthalten giftige und unverdauliche Substanzen, Antinährstoffe, die durch verschiedene Verarbeitungsmethoden entfernt werden können. Pterocarpane sind eine Klasse von Molekülen (Derivate von Isoflavonoiden), die nur in den Fabaceae vorkommen. Forisomproteine ​​finden sich in den Siebröhren von Fabaceae; einzigartig sind sie nicht von ADT abhängig.

Evolution, Phylogenie und Taxonomie[edit]

Evolution[edit]

Die Ordnung Fabales enthält etwa 7,3% der eudicot-Arten und der größte Teil dieser Vielfalt ist in nur einer der vier Familien enthalten, die die Ordnung enthält: Fabaceae. Diese Klade umfasst auch die Familien Polygalaceae, Surianaceae und Quillajaceae und ihre Ursprünge reichen 94 bis 89 Millionen Jahre zurück, obwohl ihre Diversifizierung vor 79 bis 74 Millionen Jahren begann.[1] Tatsächlich haben sich die Fabaceae während des frühen Tertiärs diversifiziert, um zusammen mit vielen anderen Familien, die zu den Blütenpflanzen gehören, ein allgegenwärtiger Teil der Biota der modernen Erde zu werden.[12][20]

Die Fabaceae haben einen reichhaltigen und vielfältigen Fossilienbestand, insbesondere für das Tertiär. Fossilien von Blumen, Früchten, Blättern, Holz und Pollen aus dieser Zeit wurden an zahlreichen Stellen gefunden.[21][22][23][24][25][26][27]

Die frühesten Fossilien, die definitiv den Fabaceae zugeordnet werden können, erschienen im frühen Paläozän (vor etwa 65 Millionen Jahren).[28] Vertreter der 3 traditionell als Mitglieder der Fabaceae anerkannten Unterfamilien – Cesalpinioideae, Papilionoideae und Mimosoideae – sowie Mitglieder der großen Kladen innerhalb dieser Unterfamilien – wie die Genistoides – wurden in späteren Perioden gefunden, beginnend zwischen Vor 55 und 50 Millionen Jahren.[20] Tatsächlich wurde im Fossilienbestand aus dem mittleren bis späten Eozän eine Vielzahl von Taxa gefunden, die die Hauptlinien der Fabaceae repräsentieren, was darauf hindeutet, dass die Mehrheit der modernen Fabaceae-Gruppen bereits vorhanden war und dass eine breite Diversifizierung während dieser Zeitabschnitt.[20]

Daher begannen die Fabaceae vor etwa 60 Millionen Jahren mit ihrer Diversifizierung und die wichtigsten Kladen trennten sich vor 50 Millionen Jahren.[29]

Das Alter der Hauptkladen der Cesalpinioideae wird auf 56 bis 34 Millionen Jahre und der basalen Gruppe der Mimosoideae auf 44 ± 2,6 Millionen Jahre geschätzt.[30][31]

Die Teilung zwischen Mimosoideae und Faboideae wird auf 59 bis 34 Millionen Jahre datiert und die basale Gruppe der Faboideae auf 58,6 ± 0,2 Millionen Jahre.[32] Es war möglich, die Divergenz einiger Gruppen innerhalb der Faboideae zu datieren, obwohl die Diversifizierung innerhalb jeder Gattung relativ neu war. Beispielsweise, Astragalus getrennt von der Oxytropis Vor 16 bis 12 Millionen Jahren. Darüber hinaus ist die Trennung der aneuploiden Spezies von Neoastragalus begann vor 4 Millionen Jahren. Inga, eine weitere Gattung der Papilionoideae mit etwa 350 Arten scheint sich in den letzten 2 Millionen Jahren auseinander entwickelt zu haben.[33][34][35][36]

Basierend auf fossilen und phylogenetischen Beweisen wurde vermutet, dass sich Hülsenfrüchte ursprünglich in ariden und/oder semiariden Regionen entlang des Tethys-Meeres während der paläogenen Periode entwickelten.[5][37] Andere behaupten jedoch, dass Afrika (oder sogar Amerika) als Ursprung der Familie noch nicht ausgeschlossen werden kann.[38][39]

Die aktuelle Hypothese über die Evolution der für die Nodulation benötigten Gene ist, dass sie nach einem Polyploidie-Ereignis aus anderen Signalwegen rekrutiert wurden.[40] Mehrere unterschiedliche Wege wurden als Spende duplizierter Gene an die Wege, die für die Nodulation benötigt werden, in Verbindung gebracht. Die Hauptspender für den Stoffwechselweg waren die Gene, die mit den Symbiose-Genen der arbuskulären Mykorrhiza, den Pollenschlauchbildungs-Genen und den Hämoglobin-Genen assoziiert sind. Eines der Hauptgene, die nachweislich zwischen dem arbuskulären Mykorrhiza-Pfad und dem Nodulations-Pfad geteilt werden, ist SYMRK und es ist an der Erkennung von Pflanzenbakterien beteiligt.[41] Das Wachstum des Pollenschlauchs ähnelt der Entwicklung des Infektionsfadens insofern, als der Infektionsfaden in einer polaren Weise wächst, die einem polaren Wachstum des Pollenschlauchs in Richtung der Samenanlagen ähnelt. Beide Wege umfassen die gleiche Art von Enzymen, Pektin abbauende Zellwandenzyme.[42] Die zur Stickstoffreduzierung erforderlichen Enzyme, Nitrogenasen, benötigen einen erheblichen ATP-Einsatz, sind aber gleichzeitig empfindlich gegenüber freiem Sauerstoff. Um die Anforderungen dieser paradoxen Situation zu erfüllen, exprimieren die Pflanzen einen Hämoglobintyp namens Leghämoglobin, von dem angenommen wird, dass er nach einem Duplikationsereignis rekrutiert wird.[43] Es wird angenommen, dass diese drei genetischen Wege Teil eines Genduplikationsereignisses sind, das dann rekrutiert wird, um bei der Knotenbildung zu arbeiten.

Phylogenie und Taxonomie[edit]

Phylogenie[edit]

Die Phylogenie der Hülsenfrüchte war Gegenstand vieler Studien von Forschungsgruppen aus der ganzen Welt. Diese Studien haben Morphologie, DNA-Daten (das Chloroplasten-Intron) verwendet trnL, die Chloroplasten-Gene rbcL und mattK, oder die ribosomalen Spacer ES IST) und kladistische Analyse, um die Beziehungen zwischen den verschiedenen Abstammungslinien der Familie zu untersuchen. Fabaceae wird durchweg als monophyletisch gewonnen.[44] Die Studien bestätigten weiterhin, dass die traditionellen Unterfamilien Mimosoideae und Papilionoideae jeweils monophyletisch waren, aber beide innerhalb der paraphyletischen Unterfamilie Caesalpinioideae verschachtelt waren.[45][44] Alle unterschiedlichen Ansätze lieferten ähnliche Ergebnisse bezüglich der Beziehungen zwischen den Hauptgruppen der Familie.[1][46][47][48][49][50][51][52][53] Nach ausführlichen Diskussionen in der Leguminosen-Phylogenetik-Community hat die Legume Phylogeny Working Group Fabaceae in sechs Unterfamilien neu klassifiziert, was die Trennung von vier neuen Unterfamilien von Caesalpinioideae und die Verschmelzung von Caesapinioideae erforderlich machte Sinn streng mit der ehemaligen Unterfamilie Mimosoideae.[4][54] Die genaue Verzweigungsreihenfolge der verschiedenen Unterfamilien ist noch ungeklärt.[55]

Taxonomie[edit]

Die Fabaceae werden nach den meisten taxonomischen Systemen, einschließlich des APG III-Systems, in die Reihenfolge Fabales eingeordnet.[2] Die Familie umfasst jetzt sechs Unterfamilien:[4]

Ökologie[edit]

Verbreitung und Lebensraum[edit]

Die Fabaceae sind im Wesentlichen weltweit verbreitet und kommen überall außer der Antarktis und der hohen Arktis vor.[1] Die Bäume kommen häufig in tropischen Regionen vor, während die krautigen Pflanzen und Sträucher außerhalb der Tropen vorherrschen.[3]

Biologische Stickstofffixierung[edit]

Wurzeln von Vicia mit weißen Wurzelknötchen sichtbar.

Querschnitt durch einen Wurzelknoten von Vicia durch ein Mikroskop beobachtet.

Die biologische Stickstofffixierung (BNF, durchgeführt von den als Diazotrophen bezeichneten Organismen) ist ein sehr alter Prozess, der wahrscheinlich im Archäischen Zeitalter seinen Ursprung hatte, als der primitiven Atmosphäre Sauerstoff fehlte. Es wird nur von Euryarchaeota und nur 6 der mehr als 50 Bakterienstämme durchgeführt. Einige dieser Linien entwickelten sich gemeinsam mit den Blütenpflanzen und bildeten die molekulare Grundlage einer für beide Seiten vorteilhaften symbiotischen Beziehung. BNF wird in Knötchen durchgeführt, die sich hauptsächlich in der Wurzelrinde befinden, obwohl sie sich gelegentlich im Stamm befinden wie in Sesbania rostrata. Die Spermatophyten, die sich mit aktinorhizalen Diazotrophen (Franken) oder mit Rhizobien, um ihre symbiotische Beziehung aufzubauen, gehören zu 11 Familien, die in der Rosidae-Klade enthalten sind (wie durch die molekulare Phylogenie des Gens von rbcL, ein Gen, das für einen Teil des RuBisCO-Enzyms im Chloroplasten kodiert). Diese Gruppierung weist darauf hin, dass die Veranlagung zur Knöllchenbildung wahrscheinlich nur einmal bei blühenden Pflanzen aufgetreten ist und als ein in bestimmten Linien erhaltenes oder verlorenes Ahnenmerkmal angesehen werden kann. Eine so breite Verteilung von Familien und Gattungen innerhalb dieser Abstammungslinie weist jedoch darauf hin, dass die Knötchenbildung mehrere Ursprünge hatte. Von den 10 Familien innerhalb der Rosidae haben 8 Knötchen, die von Actinomyces (Betulaceae, Casuarinaceae, Coriariaceae, Datiscaceae, Elaeagnaceae, Myricaceae, Rhamnaceae und Rosaceae) gebildet werden, und die beiden verbleibenden Familien, Ulmaceae und Fabaceae, haben Knötchen, die von Rhizobien gebildet werden.[57][58]

Die Rhizobien und ihre Wirte müssen sich gegenseitig erkennen können, damit die Knötchenbildung beginnen kann. Rhizobien sind spezifisch für bestimmte Wirtsarten, obwohl eine Rhizobienart oft mehr als eine Wirtsart infizieren kann. Das bedeutet, dass eine Pflanzenart von mehr als einer Bakterienart befallen sein kann. Zum Beispiel Knötchen in Akazie Senegal kann sieben Arten von Rhizobien enthalten, die drei verschiedenen Gattungen angehören. Die charakteristischsten Merkmale, die es ermöglichen, Rhizobien voneinander zu unterscheiden, sind die Geschwindigkeit ihres Wachstums und die Art der Wurzelknöllchen, die sie mit ihrem Wirt bilden.[58] Wurzelknötchen können entweder als unbestimmt, zylindrisch und oft verzweigt und als determiniert, kugelförmig mit hervorstehenden Lentizellen klassifiziert werden. Unbestimmte Knöllchen sind charakteristisch für Hülsenfrüchte aus gemäßigten Klimazonen, während bestimmte Knöllchen häufig bei Arten aus tropischen oder subtropischen Klimazonen gefunden werden.[58]

Die Bildung von Knötchen ist bei den Fabaceae üblich. Sie findet sich in der Mehrzahl ihrer Mitglieder, die nur eine Assoziation mit Rhizobien eingehen, die wiederum eine ausschließliche Symbiose mit den Fabaceae (mit Ausnahme von Parasponia, die einzige knotenbildende Gattung der 18 Ulmaceae-Gattungen). Knötchenbildung ist in allen Fabaceae-Unterfamilien vorhanden, obwohl sie bei den Caesalpinioideae weniger verbreitet ist. Alle Arten von Knötchenbildung sind in der Unterfamilie Papilionoideae vorhanden: unbestimmt (mit erhaltenem Meristem), determiniert (ohne Meristem) und der Typ eingeschlossen in Aeschynomen. Die beiden letztgenannten gelten als die modernste und spezialisierteste Art von Knötchen, da sie nur in einigen Linien der Unterfamilie Papilionoideae vorkommen. Obwohl die Knöllchenbildung in den beiden monophyletischen Unterfamilien Papilionoideae und Mimosoideae weit verbreitet ist, enthalten sie auch Arten, die keine Knöllchen bilden. Das Vorhandensein oder Fehlen von knötchenbildenden Arten innerhalb der drei Unterfamilien weist darauf hin, dass die Knöllchenbildung während der Evolution der Fabaceae mehrmals aufgetreten ist und dass diese Fähigkeit in einigen Linien verloren gegangen ist. Zum Beispiel innerhalb der Gattung Akazie, ein Mitglied der Mimosoideae, A. Pentagona bildet keine Knötchen, während andere Arten derselben Gattung leicht Knötchen bilden, wie dies bei der Fall ist Akazie Senegal, die sowohl schnell als auch langsam wachsende Rhizobienknötchen bildet.

Chemische Ökologie[edit]

Eine Vielzahl von Arten innerhalb vieler Leguminosengattungen, z Astragalus, Coronilla, Hippocrepis, Indigofera, Lotus, Securigera und Skorpion, Chemikalien herstellen, die sich von der Verbindung 3-Nitropropansäure (3-NPA, Beta-Nitropropionsäure) ableiten. Die freie Säure 3-NPA ist ein irreversibler Inhibitor der mitochondrialen Atmung, und somit hemmt die Verbindung den Tricarbonsäurezyklus. Diese durch 3-NPA verursachte Hemmung ist für Nervenzellen besonders toxisch und stellt einen sehr allgemeinen toxischen Mechanismus dar, der aufgrund der großen Anzahl von Arten, die diese Verbindung und ihre Derivate produzieren, eine tiefgreifende ökologische Bedeutung vermuten lässt. Eine zweite und eng verwandte Klasse von Sekundärmetaboliten, die in vielen Arten von Hülsenfrüchten vorkommen, wird durch Isoxazolin-5-on-Derivate definiert. Diese Verbindungen kommen insbesondere zusammen mit 3-NPA und verwandten Derivaten gleichzeitig in der gleichen Spezies vor, wie in Astragalus canadensis und Astragalus collinus. 3-NPA- und Isoxazlin-5-on-Derivate kommen auch in vielen Blattkäferarten vor (siehe Abwehr bei Insekten).[59]

Wirtschaftliche und kulturelle Bedeutung[edit]

Hülsenfrüchte sind wirtschaftlich und kulturell wichtige Pflanzen aufgrund ihrer außergewöhnlichen Vielfalt und Fülle, der Vielfalt an essbaren Gemüsesorten und aufgrund ihrer vielfältigen Verwendungsmöglichkeiten: im Gartenbau und in der Landwirtschaft, als Lebensmittel, wegen der darin enthaltenen Verbindungen die für medizinische Zwecke verwendet werden, und für die darin enthaltenen Öle und Fette, die eine Vielzahl von Anwendungen haben.[60][61][62][63]

Nahrung und Futter[edit]

Die Geschichte der Hülsenfrüchte ist eng mit der der menschlichen Zivilisation verbunden und tauchte um 6.000 v. Chr. in Asien, Amerika (die gemeine Bohne, verschiedene Sorten) und Europa (dicke Bohnen) auf Protein.

Ihre Fähigkeit, atmosphärischen Stickstoff zu binden, reduziert die Düngekosten für Landwirte und Gärtner, die Hülsenfrüchte anbauen, und bedeutet, dass Hülsenfrüchte in einer Fruchtfolge verwendet werden können, um den stickstoffarmen Boden wieder aufzufüllen. Hülsenfrüchtesamen und -blätter haben aufgrund des zusätzlichen Stickstoffs, den Hülsenfrüchte durch den Prozess erhalten, einen vergleichsweise höheren Proteingehalt als Nicht-Leguminosen-Materialien. Hülsenfrüchte werden häufig als natürliche Düngemittel verwendet. Einige Hülsenfruchtarten führen einen hydraulischen Aufzug durch, was sie ideal für den Zwischenfruchtanbau macht.[64]

Gezüchtete Hülsenfrüchte können zahlreichen Klassen angehören, darunter Futter-, Getreide-, Blüten-, Pharma-/Industrie-, Brach-/Gründünger- und Holzarten, wobei die meisten kommerziell angebauten Arten zwei oder mehr Funktionen gleichzeitig erfüllen.

Es gibt zwei große Arten von Futterleguminosen. Einige, wie Luzerne, Klee, Wicke und Arachis, werden auf Weide gesät und von Vieh beweidet. Andere Futterleguminosen wie Leucaena oder Albizia sind verholzende Strauch- oder Baumarten, die entweder von Nutztieren abgebaut oder regelmäßig vom Menschen als Futtermittel gefällt werden.

Körnerleguminosen werden wegen ihrer Samen angebaut und werden auch Hülsenfrüchte genannt. Die Samen werden für den menschlichen und tierischen Verzehr oder zur Herstellung von Ölen für industrielle Zwecke verwendet. Körnerleguminosen umfassen sowohl krautige Pflanzen wie Bohnen, Linsen, Lupinen, Erbsen und Erdnüsse.[65] und Bäume wie Johannisbrot, Mesquite und Tamarinde.

Lathyrus tuberosus, einst in Europa extensiv angebaut, bildet Knollen für den menschlichen Verzehr.[66][67]

Zu den Blütenleguminosen zählen Arten wie Lupinen, die wegen ihrer Blüten kommerziell gezüchtet werden und daher in Gärten weltweit beliebt sind. Goldregen, Robinie, Gledizien, Akazie, Mimose, und Delonix sind Zierbäume und Sträucher.

Zu den industriell angebauten Hülsenfrüchten gehören Indigofera, angebaut zur Herstellung von Indigo, Akazie, für Gummi Arabicum und, Derris, für die insektizide Wirkung von Rotenon, einer von ihr produzierten Verbindung.

Brache- oder Gründüngungsleguminosen werden angebaut, um wieder in den Boden gepflügt zu werden, um den hohen Stickstoffgehalt der meisten Hülsenfrüchte zu nutzen. Zu diesem Zweck werden zahlreiche Hülsenfrüchte angebaut, darunter Leucaena, Cyamopsis und Sesbania.

Für die Holzproduktion werden weltweit verschiedene Hülsenfrüchte angebaut, darunter zahlreiche Akazie Spezies, Dalbergia Arten, und Castanospermum australe.

Melliferous Pflanzen bieten Bienen und anderen Insekten Nektar an, um sie zu ermutigen, Pollen von den Blüten einer Pflanze zu anderen zu tragen und so die Bestäubung sicherzustellen. Einige Hülsenfrüchte wie Luzerne, Weißklee, Steinklee und verschiedene Prosopis-Arten sind gute Nektarlieferanten. Viele Pflanzen der Familie Fabaceae sind eine wichtige Pollenquelle für die Hummelarten Bombus-Hortorum. Diese Bienenart liebt eine Art besonders; Trifolium pratense, auch Rotklee genannt, ist eine beliebte Nahrungsquelle in der Ernährung von Bombus-Hortorum.[68]

Industrielle Anwendungen[edit]

Natürliches Zahnfleisch[edit]

Natürliche Gummis sind pflanzliche Exsudate, die als Folge von Schäden an der Pflanze freigesetzt werden, beispielsweise durch den Angriff eines Insekts oder einer natürlichen oder künstlichen Schnittwunde. Diese Exsudate enthalten heterogene Polysaccharide, die aus verschiedenen Zuckern bestehen und in der Regel Uronsäuren enthalten. Sie bilden viskose kolloidale Lösungen. Es gibt verschiedene Arten, die Zahnfleisch produzieren. Die wichtigsten dieser Arten gehören zu den Fabaceae. Sie werden häufig in der Pharma-, Kosmetik-, Lebensmittel- und Textilbranche eingesetzt. Sie haben auch interessante therapeutische Eigenschaften; Gummi arabicum ist beispielsweise antitussiv und entzündungshemmend. Die bekanntesten Zahnfleischarten sind Tragant (Astragalus gummifer), Gummi arabicum (Akazie Senegal) und Guarkernmehl (Cyamopsis tetragonoloba).[69]

Farbstoffe[edit]

Zur Herstellung von Farbstoffen werden verschiedene Fabaceae-Arten verwendet. Das Kernholz von Rundholz, Hämatoxylon campechianum, wird zur Herstellung von roten und violetten Farbstoffen verwendet. Die histologische Färbung, die Hämatoxylin genannt wird, wird von dieser Spezies hergestellt. Das Holz des Brasilholzbaumes (Caesalpinia echinata) wird auch zur Herstellung eines roten oder violetten Farbstoffs verwendet. Der Madrasdorn (Pithecellobium dulce) hat rötliche Früchte, die zur Herstellung eines gelben Farbstoffs verwendet werden.[70] Indigofarbstoff wird aus der Indigopflanze gewonnen Indigofera tinctoria das stammt aus Asien. In Mittel- und Südamerika werden Farbstoffe aus zwei Arten derselben Gattung hergestellt: Indigo und Maya-Blau aus Indigofera suffruticosa und Natal Indigo aus Indigofera arrecta. Gelbe Farbstoffe werden extrahiert aus Butea monosperma, allgemein Flamme des Waldes und von Färbergrünkraut genannt, (Genista tinctoria).[71]

Zierpflanzen[edit]

Hülsenfrüchte werden seit vielen Jahrhunderten weltweit als Zierpflanzen verwendet. Aufgrund ihrer großen Vielfalt an Höhen, Formen, Blättern und Blütenfarben wird diese Familie häufig bei der Gestaltung und Bepflanzung von kleinen Gärten bis hin zu großen Parks verwendet.[17] Im Folgenden finden Sie eine Liste der wichtigsten Zierleguminosenarten, geordnet nach Unterfamilie.

  • Unterfamilie Caesalpinioideae: Bauhinia forficata, Caesalpinia gilliesii, Caesalpinia spinosa, Ceratonia siliqua, Cercis siliquastrum, Gleditsia triacanthos, Gymnocladus dioica, Parkinsonia aculeata, Senna multiglandulosa.[72]
  • Unterfamilie Mimosoideae: Akazienhöhle, Akazie cultiformis, Akazien-Dealbata, Akazienkarroo, Akazie longifolia, Akazienmelanoxylon, Akazienparadoxa, Akazien-Retinoden, Akazie saligna, Akazie verticillata, Akazien-Viskose, Albizzia julibrissin, Calliandra tweediei, Paraserianthes lophantha, Prosopis chilensis.[72]
  • Unterfamilie Faboideae: Clianthus puniceus, Cytisus scoparius, Erythrina crista-galli, Erythrina falcata, Goldregen anagyroides, Lotus peliorhynchus, Lupinus arboreus, Lupinus polyphyllus, Otholobium glandulosum, Retama monosperma, Robinia hispida, Luxuriöse Robinie, Robinia pseudoacacia, Sophora japonica, Sophora macnabiana, Sophora macrocarpa, Spartium junceum, Teline monspessulana, Tipuana tipu, Wisteria sinensis.[72]

Emblematische Fabaceae[edit]

Bildergalerie[edit]

Verweise[edit]

  1. ^ ein b c d e Stevens, PF “Fabaceae”. Angiosperm Phylogeny Website. Version 7. Mai 2006. Abgerufen 28. April 2008.
  2. ^ ein b Angiosperm Phylogeny Group (2009). “Eine Aktualisierung der Klassifikation der Angiosperm Phylogeny Group für die Ordnungen und Familien von Blütenpflanzen: APG III”. Botanisches Journal der Linnean Society. 161 (2): 105–121. mach:10.1111/j.1095-8339.2009.00996.x.
  3. ^ ein b c d e Watson L.; Dallwitz, MJ (1. Juni 2007). “Die Familien der Blütenpflanzen: Leguminosae”. Abgerufen 9. Februar 2008.
  4. ^ ein b c Die Leguminosen Phylogeny Working Group (LPWG). (2017). “Eine neue Unterfamilienklassifikation der Leguminosen basierend auf einer taxonomisch umfassenden Phylogenie”. Taxon. 66 (1): 44–77. mach:10.12705/661.3.
  5. ^ ein b Schrere, BD; Lewis, Allgemeinmediziner; Lavin, M. (2005). “Biogeographie der Leguminosen”. In Lewis, G; Schrere, G.; Mackinder, B.; Schloss, M. (Hrsg.). Hülsenfrüchte der Welt. Kew, England: Königliche Botanische Gärten. S. 21–54. ISBN 978-1-900347-80-8. Archiviert von das Original am 2. Februar 2014. Abgerufen 8. Juli 2010.
  6. ^ ein b Internationaler Nomenklaturcode für Algen, Pilze und Pflanzen. Artikel 18.5 besagt: “Die folgenden Namen mit langem Gebrauch werden als gültig veröffentlicht behandelt: ….Leguminosae (nom. alt.: Fabaceae; Typ: Faba Mill. [= Vicia L.]); … Wenn die Papilionaceae als eine Familie angesehen werden, die sich vom Rest der Leguminosae unterscheidet, wird der Name Papilionaceae gegen Leguminosae konserviert.” Englische Aussprachen sind wie folgt: , und .
  7. ^ “Liste der Pflanzen der Familie Fabaceae”. Encyclopædia Britannica. Abgerufen 28. April 2021.
  8. ^ Christenhusz, MJM; Byng, JW (2016). “Die Zahl der bekannten Pflanzenarten auf der Welt und ihre jährliche Zunahme”. Phytotaxa. 261 (3): 201–217. mach:10.11646/phytotaxa.261.3.1.
  9. ^ ein b c d Judd, WS, Campbell, CS Kellogg, EA Stevens, PF Donoghue, MJ (2002), Pflanzensystematik: ein phylogenetischer Ansatz, Sinauer Axxoc, 287-292. ISBN 0-87893-403-0.
  10. ^ Magallón, SA, und Sanderson, MJ; Sanderson (2001). “Absolute Diversifikationsraten in Angiospermen-Kladen”. Evolution. 55 (9): 1762-1780. mach:10.1111/j.0014-3820.2001.tb00826.x. PMID 11681732. S2CID 38691512.CS1-Wartung: mehrere Namen: Autorenliste (Link)
  11. ^ Burnham, RJ; Johnson, KR (2004). “Südamerikanische Paläobotanik und die Ursprünge der neotropischen Regenwälder”. Philosophische Transaktionen der Royal Society B: Biologische Wissenschaften. 359 (1450): 1595-1610. mach:10.1098/rstb.2004.1531. PMC 1693437. PMID 15519975.
  12. ^ ein b Lewis G., Schrire B., Mackinder B. und Lock M. 2005. (Hrsg.) Legumes of the world. Die Royal Botanic Gardens, Kew, Reino Unido. 577 Seiten. 2005. ISBN 1-900347-80-6.
  13. ^ Doyle, JJ, JA Chappill, CD Bailey & T. Kajita. 2000. Auf dem Weg zu einer umfassenden Phylogenie der Leguminosen: Beweise aus rbcL-Sequenzen und nichtmolekularen Daten. S. 1-20 in Advances in Legume Systematik, Teil 9, (PS Herendeen und A. Bruneau, Hrsg.). Königliche Botanische Gärten, Kew, Großbritannien.
  14. ^ Kajita, T.; Ohashi, H.; Tateishi, Y.; Bailey, CD; Doyle, JJ (2001). “rbcL und Leguminosen-Phylogenie, mit besonderem Bezug auf Phaseoleae, Millettieae und Verbündete”. Systematische Botanik. 26 (3): 515–536. mach:10.1043/0363-6445-26.3.515 (inaktiv 6. Mai 2021). JSTOR 3093979.CS1-Wartung: DOI ab Mai 2021 inaktiv (Link)
  15. ^ Wojciechowski, MF, M. Lavin und MJ Sanderson; Lavin; Sanderson (2004). “Eine Phylogenie von Hülsenfrüchten (Leguminosae), die auf der Analyse des plastidären matK-Gens basiert, löst viele gut unterstützte Untergruppen innerhalb der Familie auf”. Amerikanisches Journal für Botanik. 91 (11): 1846–1862. mach:10.3732/ajb.91.11.1846. PMID 21652332.CS1-Wartung: mehrere Namen: Autorenliste (Link)
  16. ^ Phylogenie-Gruppe von Angiospermen [APG] (2003). “Eine Aktualisierung der Klassifikation der Angiosperm Phylogeny Group für die Ordnungen und Familien von Blütenpflanzen: APG II” (PDF). Botanisches Journal der Linnean Society. 141 (4): 399–436. mach:10.1046/j.1095-8339.2003.t01-1-00158.x.
  17. ^ ein b c Burkart, A. Leguminosas. Im: Dimitri, M. 1987. Enciclopedia Argentina de Agricultura y Jardinería. Tomo I. Descripción de plantas cultivadas. Redaktion ACME SACI, Buenos Aires. Seiten: 467-538.
  18. ^ Seabrook, Janet EA (1973). Eine biosystematische Untersuchung der Gattung Apios Fabricius (Leguminosae) mit besonderer Bezugnahme auf Apios Americana Medikus (M.Sc.-Arbeit). Universität von New Brunswick, Fredericton, NB.
  19. ^ Hélène L. Citerne; R.Toby Pennington; Quentin CB Cronk (8. August 2006). “Eine scheinbare Umkehr der Blütensymmetrie in der Hülsenfrucht Cadia ist eine homöotische Transformation”. PNAS. 103 (32): 12017–12020. Bibcode:2006PNAS..10312017C. mach:10.1073/pnas.0600986103. PMC 1567690. PMID 16880394.
  20. ^ ein b c Herendeen, PS, WL Crepet und DL Dilcher. 1992. Die fossile Geschichte der Leguminosae: phylogenetische und biogeographische Implikationen. Seiten 303 – 316 in Advances in Legume Systematics, Teil 4, Fossilienbestand (PS Herendeen und D.L. Dilcher, Hrsg.). Königliche Botanische Gärten, Kew, Großbritannien.
  21. ^ Krepp, WL; Taylor, DW (1985). „Die Diversifizierung der Leguminosae: Erster fossiler Nachweis der Mimosoideae und Papilionoideae“. Wissenschaft. 228 (4703): 1087–1089. Bibcode:1985Sc…228.1087C. mach:10.1126/science.228.4703.1087. ISSN 0036-8075. PMID 17737903. S2CID 19601874.
  22. ^ Crepet, WL und DW Taylor (1986). „Primitive mimosoide Blumen aus dem Paläozän-Eozän und ihre systematischen und evolutionären Implikationen“. Amerikanisches Journal für Botanik. 73 (4): 548–563. mach:10.2307/2444261. JSTOR 2444261.CS1-Wartung: verwendet Autorenparameter (Link)
  23. ^ Crepet, WL und PS Herendeen. 1992. Papilionoide Blüten aus dem frühen Eozän des südöstlichen Nordamerikas. Seiten 43–55 in Advances in Legume Systematics, Teil 4, Fossilienbestand (PS Herendeen und DL Dilcher, Hrsg.). Königliche Botanische Gärten, Kew, Großbritannien.
  24. ^ Herendeen, PS 1992. Die fossile Geschichte der Leguminosen aus dem Eozän des südöstlichen Nordamerikas. Seiten 85-160 in Advances in Legume Systematics, Teil 4, der Fossilienbestand (Herendeen, PS, und DL Dilcher, Hrsg.). Königliche Botanische Gärten, Kew, Großbritannien.
  25. ^ Herendeen, PS 2001. Der Fossilienbestand der Leguminosen: jüngste Fortschritte. In Legumes Down Under: die vierte internationale Hülsenfruchtkonferenz, Abstracts, 34–35. Australian National University, Canberra, Australien.
  26. ^ Herendeen, PS und S. Wing. 2001. Papilionoide Hülsenfrüchte und Blätter aus dem Paläozän des Nordwestens von Wyoming. Botany 2001 Abstracts, herausgegeben von der Botanical Society of America (http://www.botany2001.org/).
  27. ^ Wing, SL, F. Herrera und C. Jaramillo. 2004. Eine paläozäne Flora aus der Cerrajón-Formation, Halbinsel Guajíra, Nordost-Kolumbien. Seiten 146-147 in VII Konferenzabstracts der Internationalen Organisation für Paläobotanik (21.–26. März). Museo Egidio Feruglio, Trelew, Argentinien.
  28. ^ Fleur, Nikolaus St (24. Oktober 2019). “Colorado-Fossilien zeigen, wie Säugetiere rasten, um die Lücke der Dinosaurier zu füllen”. Die New York Times.
  29. ^ Bruneau, A., Lewis, GP, Herendeen, PS, Schrire, B., & Mercure, M. 2008b. Biogeographische Muster in früh divergierenden Kladen der Leguminosen. S. pp. 98-99, in Botanik 2008. Botanik ohne Grenzen. [Botanical Society of America, Abstracts.]
  30. ^ Bruneau, A.; Mercure, M.; Lewis, GP & Herendeen, PS (2008). „Phylogenetische Muster und Diversifikation in den Caesalpinioid-Leguminosen“. Kanadisches Journal für Botanik. 86 (7): 697–718. mach:10.1139/B08-058.
  31. ^ Lavin, M., Herendeen, PS, y Wojciechowski, MF; Herendeen; Wojciechowski (2005). “Evolutionsratenanalyse von Leguminosen impliziert eine schnelle Diversifizierung der Abstammungslinien während des Tertiärs”. Systematische Biologie. 54 (4): 575–594. mach:10.1080/10635150590947131. PMID 16085576.CS1-Wartung: mehrere Namen: Autorenliste (Link)
  32. ^ Wikström, N.; Savolainen, V.; Jagd, MW (2001). “Evolution der Angiospermen: Kalibrierung des Stammbaums”. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 268 (1482): 2211–2220. mach:10.1098/rspb.2001.1782. PMC 1088868. PMID 11674868.
  33. ^ Wojciechowski, MF 2003. Rekonstruktion der Phylogenie der Leguminosen (Leguminosae): Eine Perspektive des frühen 21. Jahrhunderts. S. pp. 5-35, in Klitgaard, BB & Bruneau, A. (Hrsg.), Advances in Legume Systematics, Teil 10, Higher Level Systematics. Königliche Botanische Gärten, Kew.
  34. ^ Wojciechowski, MF (2005). „Astragalus (Fabaceae): Eine molekulare phylogenetische Perspektive“. Bretagne. 57 (4): 382–396. mach:10.1663/0007-196X(2005)057[0382:AFAMPP]2.0.CO;2. JSTOR 4098954.
  35. ^ Wojciechowski, MF; Sanderson, MJ; Baldwin, BG; Donoghue, MJ (1993). “Monophylie des Aneuploiden” Astragalus: Nachweis von internen transkribierten Spacer-Sequenzen der nuklearen ribosomalen DNA”. Amerikanisches Journal für Botanik. 80 (6): 711–722. mach:10.2307/2445441. JSTOR 2445441.
  36. ^ Wojciechowski, Martin F., Johanna Mahn und Bruce Jones. 2006. Fabaceae. Hülsenfrüchte. Fassung vom 14. Juni 2006. Das Webprojekt Baum des Lebens, http://tolweb.org/
  37. ^ Schrere, BD; Lavin, M.; Lewis, Allgemeinmediziner (2005). „Globale Verteilungsmuster der Leguminosae: Erkenntnisse aus den jüngsten Phylogenien“. In Friis, ich; Balslev, H. (Hrsg.). Pflanzenvielfalt und Komplexitätsmuster: lokale, regionale und globale Dimensionen. Biologische Skrifter. 55. Viborg, Dänemark: Spezial-Trykkeriet Viborg A/S. S. 375–422. ISBN 978-87-7304-304-2.
  38. ^ Pan, Aaron D.; Jacobs, Bonnie F.; Herendeen, Patrick S. (2010). “Detarieae sensu lato (Fabaceae) aus dem späten Oligozän (27,23 Ma) Guang-Flussflora im Nordwesten Äthiopiens”. Botanisches Journal der Linnean Society. 163: 44–54. mach:10.1111/j.1095-8339.2010.01044.x.
  39. ^ Doyle, JJ; Luckow, MA (2003). “Der Rest des Eisbergs. Leguminosenvielfalt und Evolution in einem phylogenetischen Kontext”. Pflanzenphysiologie. 131 (3): 900–10. mach:10.1104/pp.102.018150. PMC 1540290. PMID 12644643.
  40. ^ Yokota, Keisuke; Hayashi, Makoto (2011). „Funktion und Evolution von Nodulationsgenen in Hülsenfrüchten“. Zelluläre und molekulare Biowissenschaften. 68 (8): 1341–51. mach:10.1007/s00018-011-0651-4. PMID 21380559. S2CID 13154916.
  41. ^ Markmann, Katharina; Giczey, Gabor; Parniske, Martin (2008). “Funktionale Anpassung einer Pflanzenrezeptor-Kinase ebnete den Weg für die Evolution von intrazellulären Wurzelsymbiosen mit Bakterien”. PLOS Biologie. 6 (3): e68. mach:10.1371/journal.pbio.0060068. PMC 2270324. PMID 18318603.
  42. ^ Rodríguez-Llorente, Ignacio D.; Pérez-Hormaeche, Javier; Mounadi, Kaoutar El; Dary, Mohammed; Caviedes, Miguel A.; Cosson, Viviane; Kondorosi, Adam; Ratet, Pascal; Palomares, Antonio J. (2004). “Vom Pollenschlauch zum Infektionsfaden: Rekrutierung von Medicago-Blumenpektik-Genen zur Symbiose”. Das Pflanzenjournal. 39 (4): 587–98. mach:10.1111/j.1365-313X.2004.02155.x. PMID 15272876.
  43. ^ Downie, J. Allan (2005). „Leguminosen-Hämoglobine: Symbiotische Stickstofffixierung braucht blutige Knötchen“. Aktuelle Biologie. fünfzehn (6): R196–8. mach:10.1016/j.cub.2005.03.007. PMID 15797009. S2CID 17152647.
  44. ^ ein b Martin F. Wojciechowski; Johanna Mahn; Bruce Jones (2006). “Fabaceae”. Das Webprojekt Baum des Lebens.
  45. ^ Wojciechowski, MF; Lavin, M.; Sanderson, MJ (2014). “Eine Phylogenie von Hülsenfrüchten (Leguminosae), die auf der Analyse des plastidären matK-Gens basiert, löst viele gut unterstützte Untergruppen innerhalb der Familie auf”. Amerikanisches Journal für Botanik. 91 (11): 1846–62. mach:10.3732/ajb.91.11.1846. PMID 21652332.
  46. ^ Käss E., Wink M. (1996). “Molekulare Evolution der Leguminosae: Phylogenie der drei Unterfamilien basierend auf rbcL Sequenzen”. Biochemische Systematik und Ökologie. 24 (5): 365–378. mach:10.1016/0305-1978(96)00032-4.
  47. ^ Käss E., Wink M. (1997). “Phylogenetische Beziehungen bei den Papilionoideae (Familie Leguminosae) basierend auf Nukleotidsequenzen der cpDNA (rbcL) und ncDNA (ITS1 und 2)”. Mol.-Nr. Phylogenet. Entwicklung 8 (1): 65–88. mach:10.1006/mpev.1997.0410. PMID 9242596.
  48. ^ Doyle JJ, Doyle JL, Ballenger JA, Dickson EE, Kajita T, Ohashi H (1997). “Eine Phylogenie des Chloroplasten-Gens rbcL bei den Leguminosen: taxonomische Korrelationen und Einblicke in die Evolution der Nodulation”. Bin. J.Bot. 84 (4): 541–554. mach:10.2307/2446030. JSTOR 2446030. PMID 21708606.
  49. ^ Lavin M., Doyle J. J., Palmer J. D. (1990). “Evolutionäre Bedeutung des Verlustes des Chloroplasten-DNA-invertierten Repeats in der Leguminosae-Unterfamilie Papilionoideae” (PDF). Evolution. 44 (2): 390–402. mach:10.2307/2409416. hdl:2027.42/137404. JSTOR 2409416. PMID 28564377.
  50. ^ Sanderson MJ, Wojciechowski MF (1996). “Diversifikationsraten in einer gemäßigten Leguminosengruppe: Gibt es “so viele Arten” von” Astragalus (Fabaceae)?”. Bin. J.Bot. 83 (11): 1488–1502. mach:10.2307/2446103. JSTOR 2446103.
  51. ^ Chappill JA. (1995). „Kladistische Analyse der Leguminosae: die Entwicklung einer expliziten Hypothese“. In Crisp MD, Doyle JJ (Hrsg.). Fortschritte in der Leguminosen-Systematik, Teil 7: Phylogenie. Königliche Botanische Gärten, Kew, Großbritannien. S. 1–10. ISBN 9780947643799.
  52. ^ Bruneau A, Mercure M, Lewis GP, Herendeen PS (2008). „Phylogenetische Muster und Diversifikation in den Caesalpinioid-Leguminosen“. Botanik. 86 (7): 697–718. mach:10.1139/B08-058.
  53. ^ Cardoso D, Pennington RT, de Queiroz LP, Boatwright JS, Van Wykd BE, Wojciechowskie MF, Lavin M (2013). “Rekonstruktion der tiefverzweigten Beziehungen der papilionoiden Leguminosen”. S.Afr. J. Bot. 89: 58–75. mach:10.1016/j.sajb.2013.05.001.
  54. ^ Koenen EJM, Ojeda DI, Steeves R, Migliore J, Bakker FT, Wieringa JJ, Kidner C, Hardy OJ, Pennington RT, Bruneau A, Hughes CE. (2019). “Genomische Sequenzdaten im großen Maßstab lösen die tiefsten Divergenzen in der Phylogenie der Leguminosen auf und unterstützen einen nahezu gleichzeitigen evolutionären Ursprung aller sechs Unterfamilien”. Neuer Phytologe. 225 (3): 1355–1369. mach:10.1111/nph.16290. PMC 6972672. PMID 31665814.CS1-Wartung: verwendet Autorenparameter (Link)
  55. ^ Zhang R, Wang YH, Jin JJ, Stull GW, Bruneau A, Cardoso D, De Queiroz LP, Moore MJ, Zhang SD, Chen SY, Wang J, Li DZ, Yi TS. (2020). “Erforschung des phylogenomischen Konflikts der Plastiden liefert neue Einblicke in die tiefen Beziehungen der Leguminosen”. Syst. Biol. 69 (4): 613–622. mach:10.1093/sysbio/syaa013. PMC 7302050. PMID 32065640.CS1-Wartung: verwendet Autorenparameter (Link)
  56. ^ HINWEIS: Der subfamiliäre Name Papilionoideae für Faboideae ist durch den Internationalen Nomenklaturcode für Algen, Pilze und Pflanzen, Artikel 19.8 ., zugelassen
  57. ^ Lloret, L.; Martínez-Romero, E. (2005). “Evolución y Filogenia de”. Rhizobium. 47 (1–2): 43–60. Archiviert von das Original am 11.04.2013.
  58. ^ ein b c Sprent, JI 2001. Knötchenbildung bei Hülsenfrüchten. Königliche Botanische Gärten, Kew, Großbritannien.
  59. ^ Becker T.; et al. (2017). „Eine Geschichte aus vier Königreichen – von Isoxazolin-5-on- und 3-Nitropropansäure abgeleitete Naturstoffe“. Naturproduktberichte. 34 (4): 343–360. mach:10.1039/C6NP00122J. PMID 28271107.
  60. ^ Allen, ON und EK Allen. 1981. The Leguminosae, A Source Book of Characteristics, Uses, and Nodulation. Die University of Wisconsin Press, Madison, USA.
  61. ^ Duke, JA 1992. Handbuch der Hülsenfrüchte von wirtschaftlicher Bedeutung. Plenum Press, New York, USA.
  62. ^ Graham, PH; Vance, CP (2003). “Leguminosen: Bedeutung und Einschränkungen für eine stärkere Verwendung”. Pflanzenphysiologie. 131 (3): 872–877. mach:10.1104/pp.017004. PMC 1540286. PMID 12644639.
  63. ^ Wojciechowski, MF 2006. Landwirtschaftlich und wirtschaftlich wichtige Hülsenfrüchte.. Aufgerufen am 15. November 2008.
  64. ^ Sprent, Janet I. (2009). Nodulation von Hülsenfrüchten: Eine globale Perspektive. Ames, Iowa: Wiley-Blackwell. s. 12. ISBN 978-1-4051-8175-4. Vorschau verfügbar unter Google Bücher.
  65. ^ Die Genbank und Züchtung von Körnerleguminosen (Lupine, Wicke, Soja und Beah) / BS Kurlovich und SI Repyev (Hrsg.), – St. Petersburg, The NI Vavilov Institute of Plant Industry, 1995, 438p. – (Theoretische Grundlagen der Pflanzenzüchtung. V.111)
  66. ^ Hossaert-Palauqui, M.; Delbos, M. (1983). „Lathyrus tuberosus L. Biologie und Perspektiven d’amélioration“. Journal d’Agriculture Traditionnelle et de Botanique Appliquée. 30 (1): 49–58. mach:10.3406/jatba.1983.3887. ISSN 0183-5173.
  67. ^ “Knolle Erbse, Lathyrus tuberosus – Blumen – NatureGate”. www.luontoportti.com. Abgerufen 28. Juli 2019.
  68. ^ Goulson, J.; Kaden, JC; Lepais, GC (2011). „Bevölkerungsstruktur, Ausbreitung und Kolonisationsgeschichte des Gartenhummels Bombus Hortorum in den Western Isles of Scotland“. Erhaltungsgenetik. 12 (4): 867–879. mach:10.1007/s10592-011-0190-4. S2CID 3937722.
  69. ^ Kuklinski, C. 2000. Farmacognosia: estudio de las drogas y sustancias medicamentosas de origen natural. Ediciones Omega, Barcelona. ISBN 84-282-1191-4
  70. ^ Marquez, AC, Lara, OF, Esquivel, RB & Mata, ER 1999. Composición, usos y actividad biológica: Plantas medicinales de México II. UNAM. Erste Ausgabe. Mexiko df
  71. ^ “Besen, Färber”. Abgerufen 1. September 2020.
  72. ^ ein b c Macaya J. 1999. Leguminosen arbóreas y arbustivas cultivadas en Chile. Chloris Chilensis Año 2. Nº1.
  73. ^ Ministerio de Educación de la Nación. Subsecretaria de Coordinación Administrativa. Día de la Flor Nacional “El Ceibo”. Efemérides Culturales Argentinas. Eingesehen am 3. März 2010.
  74. ^ Gilbert Vargas Ulate. 1997. Geografía turística von Costa Rica. EUNED, 180 S. ISBN 9977-64-900-6, 9789977649009.
  75. ^ “Lei Nº 6.607, de 7 de dezembro de 1978. O Presidente da República, faço sabre que o Congresso Nacional decreta e eu sanciono a seguinte Lei: Art. 1º- É declarada Árvore Nacional a leguminosa denominada Pau-Brasil (Caesalpinia echinata, Lam), cuja festa será comemorada, anualmente, quando o Ministério da Educação e Cultura promoverá campanha elucidativa sobre a relevância daquela espécie vegetal na História do Brasil.”
  76. ^ Boden, Anne (1985). “Goldenes Wattle: Blumenemblem Australiens” (http). Australian National Botanic Gardens. Abgerufen 8. Oktober 2008.
  77. ^ Williams, Martin (1999). “Goldene rätselhafte Schönheit” (http). Bahuunien. Abgerufen 8. Oktober 2008.

Externe Links[edit]


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